猴源细小病毒的人工感染及免疫预防研究

猴源细小病毒的人工感染及免疫预防研究

论文摘要

细小病毒(Parvovirus)是一类在自然界中分布极为广泛的DNA病毒。细小病毒科细小病毒属的主要成员包括犬细小病毒(CPV)、猫泛白细胞减少症病毒(FPV)、貂肠炎病毒(MEV)、阿留申病毒(ADV)等近20种病毒。猴细小病毒(simian parvovirus, SPV)是从有严重贫血的猕猴(cynomolgus monkeys)分离出的一种细小病毒。该病毒感染猴子的临床表现与人类感染人细小病毒B19(B19病毒)的临床表现有许多相似性[1]。本实验室从患有严重传染性腹泻的猴体内分离出一株猴源细小病毒,该毒株感染猴子的临床症状类似犬猫细小病毒性肠炎。VP2基因序列分析表明该病毒VP2基因序列与FPV VP2核苷酸的同源性为98.75%,与CPV VP2核苷酸的同源性为98.15%[2]。猴的感染表明,随着基因突变细小病毒的宿主范围和致病性在不断地在发生着变化,其如何实现跨越种间屏障及其能否跨种感染人类等问题仍不清楚。国内外尚未见到对其进行致病性、宿主范围、抗原性、免疫原性和血清学调查等研究。因此本研究通过分离鉴定获得一株猴源细小病毒;用该毒株分别实验感染对该病毒HI抗体小于1:2的1-2月龄健康家猫、家犬、食蟹猴、雪貂、水貂和荷兰兔各3只,另3只作对照,通过动物感染实验初步确定该分离株的致病性和动物感染范围;同时,为了解细小病毒在我国猴群中的感染情况,对2010年~2011年间收集的来自我国北京地区总计160只圈养猴的血清样品进行了猴源细小病毒HI抗体调查;为了解该猴源细小病毒的抗原性和免疫原性,本研究还研制了该猴源细小病毒的灭活苗并对其进行免疫实验研究。结果证实该病毒分离株为强毒株,可以突破种间屏障,感染猴、家犬和家猫;抗体调查结果显示猴血清的猴源细小病毒HI抗体阳性率为58.1 %,证实细小病毒在我国北京地区圈养猴群中感染比较普遍;免疫实验结果证实该毒株具有较好的免疫原性和抗原性,其灭活苗免疫接种猴能诱导产生抗细小病毒的特异性免疫反应。本研究为进一步确定该病毒分离株的动物感染谱、开展猴源细小病毒的流行病学调查及免疫预防奠定了基础。该病毒分离株是否为FPV或CPV变异株,如何跨种传播给猴并发生致病性突变尚需进一步研究。

论文目录

  • 英文缩略词表
  • 摘要
  • Abstract
  • 前言
  • 实验一 猴源细小病毒的分离与鉴定
  • 1 材料
  • 1.1 病料
  • 1.2 主要试剂
  • 1.3 主要器材
  • 1.4 细胞与病毒
  • 1.5 其它
  • 2 方法
  • 2.1 病毒分离
  • 2.2 样品及分离培养的病毒液中 DNA 的提取
  • 2.3 PCR 检测
  • 2.4 形态学观察
  • 2.5 半数细胞感染量(TCID50)
  • 2.6 血凝性实验
  • 2.7 VP2 基因扩增和序列分析
  • 3 结果
  • 3.1 病毒分离
  • 3.2 PCR 鉴定
  • 3.3 形态学观察
  • 3.4 半数细胞感染量(TCID50)
  • 3.5 血凝性实验
  • 3.6 VP2 基因序列测定与分析
  • 4 讨论
  • 5 小结
  • 实验二 猴源细小病毒的动物感染谱实验
  • 1 材料和方法
  • 1.1 病毒和细胞
  • 1.2 实验动物
  • 1.3 病毒的培养与鉴定
  • 1.4 人工感染实验
  • 1.5 病理组织学观察与免疫组织化学染色
  • 1.6 超微结构观察
  • 2 结果
  • 2.1 病毒的培养与鉴定
  • 2.2 人工感染实验
  • 2.3 猴体回归实验
  • 3 讨论
  • 4 小结
  • 实验三 猴血清猴源细小病毒抗体调查
  • 1 材料
  • 1.1 血清
  • 1.2 病料
  • 1.3 病毒和细胞
  • 2 方法
  • 2.1 样品和猪红细胞的处理
  • 2.2 HA/HI 基本操作方法
  • 2.3 缓冲液体系的选择
  • 2.4 缓冲液pH 值的选择
  • 2.5 兔血清浓度的选择
  • 2.6 猪红细胞浓度的选择
  • 2.7 反应温度的选择
  • 2.8 阿氏液浓度和保存期限的选择
  • 2.9 猴血清细小病毒抗体调查
  • 3 结果
  • 3.1 缓冲液的选择
  • 3.2 缓冲液pH 值的选择
  • 3.3 兔血清浓度的选择
  • 3.4 猪红细胞浓度的选择
  • 3.5 反应温度的选择
  • 3.6 阿氏液浓度的选择
  • 3.7 猴血清猴源细小病毒抗体调查
  • 4 讨论
  • 5 小结
  • 实验四 猴源细小病毒免疫猴及攻毒保护实验
  • 1 材料
  • 1.1 病毒和细胞
  • 1.2 实验动物
  • 1.3 疫苗
  • 1.4 主要试剂和仪器
  • 2 方法
  • 2.1 猴源细小病毒灭活苗的制备
  • 2.2 灭活苗的检定
  • 2.3 猴免疫实验
  • 2.4 猴攻毒保护实验
  • 3 结果
  • 3.1 病毒的培养和毒力测定
  • 3.2 病毒的纯化和鉴定
  • 3.3 灭活疫苗的性状、稳定性与安全性
  • 3.4 灭活疫苗免疫小鼠血清效价的测定
  • 3.5 CPV VP2-CAV2 活载体苗及猴源细小病毒灭活苗对猴的安全性
  • 3.6 免疫猴抗猴源细小病毒抗体水平检测
  • 3.7 抗CAV-2 抗体检测
  • 3.8 免疫猴的外周血淋巴细胞转化试验
  • 3.9 攻毒保护实验
  • 4 讨论
  • 4.1 病毒的纯化
  • 4.2 免疫猴体液免疫和细胞免疫水平检测
  • 5 小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 附录
  • 中文综述
  • 个人简历
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].猫细小病毒广西株的分离鉴定及动物发病模型的建立[J]. 中国兽医科学 2020(01)
    • [2].抗新型鸭细小病毒卵黄抗体的制备、纯化及效价测定[J]. 黑龙江畜牧兽医 2020(10)
    • [3].山东地区猫细小病毒流行病学调查[J]. 现代畜牧兽医 2020(07)
    • [4].细小病毒分子生物学检测方法的研究进展[J]. 中国兽医学报 2019(01)
    • [5].鸡细小病毒研究进展[J]. 黑龙江畜牧兽医 2019(23)
    • [6].犬类细小病毒的诊断与防治要点[J]. 农民致富之友 2018(03)
    • [7].鸭细小病毒地高辛标记探针的制备与应用[J]. 中国兽医学报 2016(12)
    • [8].随诊细小病毒一例[J]. 中国动物保健 2017(04)
    • [9].一例全窝幼犬患细小病毒的治疗分析体会[J]. 吉林畜牧兽医 2020(02)
    • [10].动物细小病毒致病机制的研究进展[J]. 河南农业科学 2018(08)
    • [11].猴源细小病毒血凝和血凝抑制试验的优化与应用[J]. 中国实验动物学报 2011(06)
    • [12].猫细小病毒、犬细小病毒、貂细小病毒的特征比较[J]. 中国畜牧兽医 2009(07)
    • [13].细小病毒宿主进化的研究进展[J]. 中国兽医杂志 2018(12)
    • [14].中国东南沿海蝙蝠携带细小病毒的初步分子鉴定[J]. 寄生虫与医学昆虫学报 2019(01)
    • [15].肉食兽细小病毒研究进展[J]. 吉林畜牧兽医 2016(06)
    • [16].猫细小病毒的分离与鉴定[J]. 吉林畜牧兽医 2008(10)
    • [17].猫细小病毒的分离与鉴定[J]. 动物医学进展 2013(09)
    • [18].马细小病毒:一种威胁国内马产业的新病原[J]. 中国预防兽医学报 2018(11)
    • [19].马抗猫细小病毒特异性免疫球蛋白的研制[J]. 中国畜牧兽医 2010(01)
    • [20].家蚕细小病毒样病毒的研究进展[J]. 生命科学 2012(03)
    • [21].貉细小病毒研究概述[J]. 吉林畜牧兽医 2018(03)
    • [22].水貂细小病毒单克隆抗体的制备及纯化方法的优化[J]. 黑龙江畜牧兽医 2014(23)
    • [23].一例犬早期细小病毒的诊治[J]. 福建农业 2012(01)
    • [24].犬细小病毒性肠炎的防控措施[J]. 畜牧兽医科技信息 2020(05)
    • [25].猪细小病毒病的诊断及防治[J]. 农业开发与装备 2018(07)
    • [26].水貂阿留申细小病毒的致病机制、鉴定及防治方法[J]. 山东畜牧兽医 2017(04)
    • [27].不输液治疗犬细小病毒性肠炎技术[J]. 山东畜牧兽医 2014(12)
    • [28].新型番鸭细小病毒的发现及其感染的临床表现[J]. 福建农业学报 2015(05)
    • [29].犬腹泻诊治[J]. 四川畜牧兽医 2020(10)
    • [30].检测水禽源细小病毒的胶体金试纸条的研制[J]. 中国预防兽医学报 2017(09)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    猴源细小病毒的人工感染及免疫预防研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢