农杆菌介导薰衣草转化体系的建立与冷诱导基因的导入

农杆菌介导薰衣草转化体系的建立与冷诱导基因的导入

论文摘要

薰衣草是唇形花科薰衣草属多年生半阴性亚灌木植物,原产于地中海地区,是主要的天然香料植物之一。由于薰衣草在我国境内难以安全越冬,其种植区域及商业利用都受到了约束。运用基因工程技术,通过有针对性的转基因改良方法,可以在提高薰衣草耐寒能力的同时,改善薰衣草精油的质量和产量。本研究在优化薰衣草再生系统和农杆菌介导遗传转化体系的基础上,采用农杆菌介导法获得了含雪莲冷诱导基因(XCH)的转基因薰衣草,以期提高薰衣草抗寒能力和精油产量,同时为利用转基因技术改良薰衣草耐寒能力和品质提供参考依据。主要研究结果如下:1.通过试验确定了薰衣草(Lavandula angustifolia,cv.Munstead)不同外植体离体培养的最佳培养基,并对多种影响因素进行了研究。结果表明,薰衣草茎段直接再生的最佳培养基为:MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 2.0 mg/L。薰衣草愈伤组织高频再生体系为:愈伤诱导继代培养基MS+2,4-D 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L,芽分化培养基MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 2.0 mg/L。将不同外植体来源的薰衣草再生芽丛中较粗壮的的单芽切下后接种在芽继代培养基MS+NAA 2.0 mg/L+6-BA 0.5 mg/L上,壮苗30d左右,转入生根培养基1/2MS+IAA 0.5 mg/L+6-BA 0.1 mg/L后可获得薰衣草的组培再生苗。2.通过对抑菌剂Cef、筛选剂Hyg浓度、农杆菌EHA105生长曲线及影响转化率的因素的研究,初步建立了根癌农杆菌介导的薰衣草叶片来源的愈伤组织和茎段的遗传转化体系。愈伤组织的遗传转化最适条件为:在MS+2.4-D0.1 mg/L+6-BA0.5 mg/L培养基上继代2周,大小为2~3mm2的愈伤组织,经OD6000.5左右的农杆菌侵染10min,共培养2 d,延迟筛选10 d;Cef的脱菌浓度为200 mg/L,Hyg的筛选浓度为10 mg/L,筛选抗性愈伤4周,30 mg/L Hyg继续筛选抗性愈伤,10 mg/L Hyg芽分化生长筛选浓度,5 mg/L Hyg生根抗性筛选浓度。茎段遗传转化最适条件为:在MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 2.0mg/L培养基上,预培养3d,经OD6000.5左右的农杆菌侵染15 min,共培养3 d,延迟筛选7 d;以200 mg/L Cef为脱菌浓度,10 mg/L Hyg为茎段分化抗性筛选浓度,5 mg/L Hyg生根抗性筛选浓度。两种转化系统所获得的GFP瞬时表达率都很高,均在90%以上。愈伤组织筛选3周后,抗性愈伤率为37.7%。茎段在筛选培养基上筛选3周后,抗性率为15.6%。但最后仅愈伤组织再生系统获得了1棵转基因苗。3.对通过愈伤组织再生系统获得的转基因植株进行PCR扩增,得到了与阳性对照XCH(643bp)目的基因相同的特异片断,从分子水平上证明了目的基因已经整合到薰衣草基因组中,转化率达到1.03%。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 1 文献综述
  • 1.1 农杆菌介导遗传转化的研究进展
  • 1.1.1 农杆菌介导遗传转化的机理
  • 1.1.2 农杆菌介导遗传转化宿主的研究进展
  • 1.1.3 农杆菌介导的植物遗传转化的主要影响因素
  • 1.2 植物抗寒相关基因的研究进展
  • 1.2.1 植物抗寒相关基因
  • 1.2.2 植物冷诱导基因研究进展
  • 1.3 薰衣草组织培养和遗传转化研究进展
  • 1.3.1 薰衣草组织培养研究进展
  • 1.3.2 薰衣草遗传转化研究进展
  • 2 引言
  • 2.1 选题依据
  • 2.2 研究内容
  • 2.3 研究目的和意义
  • 3 材料与方法
  • 3.1 薰衣草离体再生体系
  • 3.1.1 材料的准备
  • 3.1.2 茎段直接再生培养基的确定
  • 3.1.3 (胚性)愈伤组织的诱导和继代培养基
  • 3.1.4 愈伤组织芽分化培养基
  • 3.1.5 芽继代和生根培养基
  • 3.1.6 培养条件
  • 3.2 农杆菌介导薰衣草遗传转化体系
  • 3.2.1 试验材料
  • 3.2.2 抗生素(头孢霉素)对农杆菌的抑制作用
  • 3.2.3 最佳潮霉素筛选浓度的确定
  • 3.2.4 根癌农杆菌增殖曲线的测定
  • 3.2.5 农杆菌转化
  • 3.2.6 转化体的筛选与再生
  • 3.2.7 GFP瞬时检测
  • 3.2.8 薰衣草基因组DNA的提取
  • 3.2.9 转基因薰衣草PCR检测
  • 4 结果与分析
  • 4.1 薰衣草离体再生体系
  • 4.1.1 茎段直接再生芽
  • 4.1.2 (胚性)愈伤组织诱导和继代
  • 4.1.3 愈伤组织芽分化培养基
  • 4.1.4 生根培养基
  • 4.2 农杆菌介导薰衣草遗传转化体系
  • 4.2.1 头孢霉素对农杆菌的抑制作用
  • 4.2.2 潮霉素筛选浓度的确定
  • 4.2.3 根癌农杆菌EHA105生长曲线的测定
  • 4.2.4 农杆菌介导薰衣草愈伤组织转化的影响因素
  • 4.2.5 农杆菌介导薰衣草茎段转化的影响因素
  • 4.2.6 转基因抗性苗的获得
  • 4.2.7 转化材料的PCR检测
  • 5 讨论
  • 5.1 薰衣草离体再生体系
  • 5.1.1 植物激素对薰衣草组织培养的影响
  • 5.1.2 两种高频再生体系的质量评价
  • 5.1.3 薰衣草组织培养中的褐化现象
  • 5.2 农杆菌介导薰衣草遗传转化体系
  • 5.2.1 薰衣草遗传转化最适条件的确定
  • 5.2.2 两种植物基因转化受体系统的质量评价
  • 5.2.3 乙酰丁香酮(AS)
  • 5.2.4 抑菌剂和筛选剂的确定
  • 6 结论
  • 6.1 薰衣草愈伤组织和茎段的高频再生体系的建立
  • 6.2 薰衣草基因转化受体系统的初步建立
  • 6.3 转基因植株的PCR检测
  • 参考文献
  • 致谢
  • 作者简介
  • 在读期间发表的学术论文
  • 附表:文中所用缩略语
  • 相关论文文献

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