海参肠乙酰胆碱酯酶的提取、纯化及其特性研究

海参肠乙酰胆碱酯酶的提取、纯化及其特性研究

论文摘要

采用含01% Triton X-100的PBS缓冲液(0.1mol/L, pH7.4)分别从海参肠及体壁中提取获得AChE粗酶,结果表明,海参肠与体壁AChE粗酶具有相似的酶学性质,其最适反应pH值为8.0,pH在6-9时稳定;最适反应温度为35℃左右,在25-40℃内热稳定性较好。海参AChE粗酶液能有效水解碘化硫代乙酰胆碱(AcSChI),但对碘化硫代丁酰胆碱(BuSChI)的作用较弱。当AcSChI浓度大于50 mmol/L时,产生明显的底物过量抑制效应。Sn2+、Zn2+、Hg2+、Ag+、Cr6+、Cu2+及毒扁豆碱和BW284c51均对海参肠和海参体壁AChE粗酶有不同程度的抑制作用。采用紫外照射30 min后室温静置的方法诱导海参肠自溶,对其自溶前后AChE的酶活变化进行研究,发现自溶前后AChE酶活无显著变化。在紫外照射30 min,室温静置4h条件下,通过考察AChE抑制剂毒扁豆碱对海参肠自溶过程中TCA可溶性蛋白溶出速率的影响,发现毒扁豆碱可显著促进海参肠的自溶程度,表明AChE对海参肠自溶可能具有一定的抑制作用。从海参肠中提取的AChE粗酶液经DEAE-52阴离子交换层析、Sepharose CL-6B凝胶层析,纯化倍数达35.49倍,S DS-PAGE测定显示一条带,分子量约为68 kDa。测得该酶的最适反应pH值为7.5,pH在6-8时稳定;最适反应温度为35℃左右,25~40℃内热稳定性较好。其特异性底物为AcSChI,水解该底物的Km值为0.62 mmol/L。当AcSChI浓度大于0.8mmol/L时产生明显的底物过量抑制效应。毒扁豆碱和BW284c51对纯化后的酶有明显的抑制作用,iso-OMPA对酶的抑制作用较弱。以3-羧基苯基-乙基二甲基铵为配基,与溴化氰活化琼脂糖凝胶交联制备亲和层析柱,分离海参肠中AChE,对其洗脱条件进行优化。结果显示,其适宜的平衡体系为含0.3mol/L NaCl的PBS (0.05 mol/L, pH7.4)缓冲液,适宜洗脱体系为含0.2mol/L四乙基碘化铵的P BS(0.05 mol/L, pH7.4)缓冲液。此条件下,海参肠AChE可得到较好的吸附和分离。初步纯化后的AChE经Native-PAGE电泳分离出三条具有酶活性的条带,说明AChE在海参肠内可能以多种形式存在,呈现多态性。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 绪论
  • 1.1 海参
  • 1.1.1 海参概述
  • 1.1.2 海参的种类和分布
  • 1.1.3 海参的营养与功效
  • 1.1.4 海参的自溶
  • 1.1.5 海参内源酶的研究进展
  • 1.2 乙酰胆碱酯酶(AChE)概述
  • 1.2.1 AChE的结构特点
  • 1.2.2 AChE的反应特点及机理
  • 1.2.3 AChE的分子存在形式
  • 1.2.4 AChE的功能及应用
  • 1.3 AChE分离纯化的研究进展
  • 1.3.1 AChE的来源
  • 1.3.2 AChE的分离纯化方法
  • 1.3.3 昆虫来源AChE的分离纯化
  • 1.3.4 植物来源AChE的分离纯化
  • 1.3.5 动物来源AChE的分离纯化
  • 1.4 本论文研究的意义及主要内容
  • 第二章 海参乙酰胆碱酯酶粗酶的特性研究
  • 2.1 前言
  • 2.2 材料与方法
  • 2.2.1 材料
  • 2.2.2 主要实验仪器
  • 2.2.3 主要实验试剂
  • 2.3 实验方法
  • 2.3.1 海参AChE粗酶的提取
  • 2.3.2 蛋白质含量的测定
  • 2.3.2.1 考马斯亮蓝G-250染色法测蛋白质含量
  • 2.3.2.2 Lowry法测定蛋白质含量
  • 2.3.3 AChE活性的测定
  • 2.3.4 AChE粗酶的特性分析
  • 2.3.4.1 最适反应pH的确定
  • 2.3.4.2 最适反应温度的确定
  • 2.3.4.3 pH稳定性的确定
  • 2.3.4.4 酶热稳定性的确定
  • 2.3.4.5 底物浓度对酶的影响
  • 2.3.4.6 底物特异性的研究
  • 2.3.4.7 金属离子对酶的影响
  • 2.3.4.8 抑制剂对酶的影响
  • 2.3.5 AChE在海参肠自溶中的作用分析
  • 2.3.5.1 AChE在海参肠自溶前后的变化
  • 2.3.5.2 AChE抑制剂对海参自溶的影响
  • 2.4 结果与讨论
  • 2.4.1 海参AChE粗酶性质的研究
  • 2.4.1.1 海参AChE粗酶的最适反应pH
  • 2.4.1.2 海参AChE粗酶的最适反应温度
  • 2.4.1.3 海参AChE粗酶的pH稳定性
  • 2.4.1.4 海参AChE粗酶的热稳定性
  • 2.4.1.5 底物浓度对海参AChE粗酶的影响
  • 2.4.1.6 海参AChE粗酶的底物特异性
  • 2.4.1.7 金属离子对海参AChE粗酶的影响
  • 2.4.1.8 抑制剂对海参AChE粗酶的影响
  • 2.4.2 AChE在海参自溶过程中的作用
  • 2.4.2.1 AChE在海参肠自溶前后的变化
  • 2.4.2.2 AChE抑制剂对海参肠自溶的影响
  • 2.5 本章小结
  • 第三章 海参肠乙酰胆碱酯酶的纯化及其特性研究
  • 3.1 前言
  • 3.2 材料与方法
  • 3.2.1 材料
  • 3.2.2 主要实验仪器
  • 3.2.3 主要实验试剂
  • 3.3 实验方法
  • 3.3.1 海参肠AChE粗酶的提取
  • 3.3.2 考马斯亮蓝G-250染色法测蛋白质含量
  • 3.3.3 AChE活性的测定
  • 3.3.4 海参肠AChE的分离纯化
  • 3.3.4.1 DEAE-52阴离子交换层析
  • 3.3.4.2 Sepharose CL-6B凝胶层析
  • 3.3.5 SDS-PAGE电泳
  • 3.3.6 海参肠AChE酶学特性研究
  • 3.3.6.1 最适反应pH的确定
  • 3.3.6.2 最适反应温度的确定
  • 3.3.6.3 pH稳定性的确定
  • 3.3.6.4 酶热稳定性的确定
  • 3.3.6.5 底物特异性及反应动力学的研究
  • 3.3.6.6 抑制剂对酶活力的影响
  • 3.4 结果与讨论
  • 3.4.1 海参肠AChE的分离纯化
  • 3.4.1.1 DEAE-52阴离子交换层析
  • 3.4.1.2 Sepharose CL-6B凝胶层析
  • 3.4.2 海参肠AChE的纯化结果分析
  • 3.4.2.1 纯化倍数及得率
  • 3.4.2.2 SDS-PAGE对分子量的测定
  • 3.4.3 海参肠AChE的酶学特性
  • 3.4.3.1 酶的最适pH
  • 3.4.3.2 酶的最适反应温度
  • 3.4.3.3 酶的pH稳定性
  • 3.4.3.4 酶的热稳定性
  • 3.4.3.5 底物特异性的研究
  • 3.4.3.6 抑制剂对酶活力的影响
  • 3.5 本章小结
  • 第四章 海参肠乙酰胆碱酯酶亲和层析洗脱条件的优化
  • 4.1 前言
  • 4.2 材料与方法
  • 4.2.1 材料
  • 4.2.2 主要实验仪器
  • 4.2.3 主要实验试剂
  • 4.3 实验方法
  • 4.3.1 海参肠粗酶的提取
  • 4.3.2 AChE活性的测定
  • 4.3.3 DEAE-52阴离子交换层析
  • 4.3.4 亲和层析
  • 4.3.4.1 CEA亲和柱的制备
  • 4.3.4.2 亲和层析洗脱条件优化
  • 4.3.5 电泳分析
  • 4.3.5.1 SDS-PAGE电泳
  • 4.3.5.2 Native-PAGE电泳
  • 4.3.5.3 活性染色
  • 4.4 结果与讨论
  • 4.4.1 亲和层析洗脱条件优化
  • 4.4.1.1 离子强度对吸附效果的影响
  • 4.4.1.2 洗脱液的选择对分离效果的影响
  • 4.4.1.3 样品纯度对分离效果的影响
  • 4.4.2 电泳分析
  • 4.5 本章小结
  • 第五章 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 附录A
  • 相关论文文献

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