论文摘要
1,3-丙二醇(1,3-PD)是国际上公认的六大石化新产品之一,其主要功能是作为合成聚酯、聚醚和聚亚氨酯的单体。1,3-PD的生产方法有化学合成法和生物转化法。生物转化法生产1,3-PD具有显著的优点,成为当前的研究热点。为便于研究,首先确立了在克雷伯氏杆菌和大肠杆菌两个体系中,甘油脱水酶(GDHt)、1,3-丙二醇氧化还原酶(PDOR)及其同工酶(YQHD)的酶活测量方法。确定了在缓冲溶液中加入2 mmol/L的二硫苏糖醇DTT可以明显提高甘油脱水酶,1,3-丙二醇氧化还原酶及其同工酶的测量准确度。实验结果表明在功率300 w时,克雷伯氏杆菌和重组大肠杆菌JM109 (pHsh-dhaB-yqhD)能较好保持关键酶酶活的破碎条件均为:总超声破碎时间5 min,每隔4 s破碎1 s;酶活较适宜的测量条件为:GDHt酶活测定所用磷酸盐缓冲液的较适宜浓度为0.045 mol/L,来自克雷伯氏杆菌和大肠杆菌JM109 (pHsh-dhaB-yqhD)的GDHt最适宜pH分别为7.2和7; PDOR和YQHD测定所用碳酸盐缓冲液的较适浓度为0.1 mol/L,来自克雷伯氏杆菌的PDOR和大肠杆菌JM109 (pHsh-dhaB-yqhD)的YQHD较适宜pH分别为7.2、9;GDHt和PDOR,YQHD酶活测定的适宜温度分别为37℃、45℃、45℃。由于克雷伯氏杆菌(Klebsiella pneumoniae)1,3-PD合成途径中,加强甘油脱水酶基因表达,会导致因NADH供应不足使3-羟基丙醛累积,并对菌体生长及1,3-PD合成造成负面影响。为改善Klebsiella pneumoniae 1,3-PD合成途径,利用PCR技术从大肠杆菌(Escherichia coli)中扩增出以NADPH为辅酶的1,3-PD氧化还原酶同工酶基因yqhD,从克雷伯氏杆菌中扩增出GDHt基因dhaB,构建了产1,3-PD关键酶基因的串联载体pEtac-dhaB-tac-yqhD,并将其转入到野生Klebsiella pneumoniae中。全细胞蛋白电泳分析显示Klebsiella pneumoniae (pEtac-dhaB-tac-yqhD)中GDHt和PDOR(YQHD)的蛋白表达量分别比野生Klebsiella pneumoniae高25.2%和17.4%,酶活则分别由0.59 U·mg-1和19 U·mg-1提高到1.02 U·mg-1和32 U·mg-1,蛋白含量和酶活的大幅提升,证明dhaB和yqhD在Klebsiella pneumoniae中得到了表达。通过抗生素浓度梯度实验,确定了Klebsiella pneumoniae (pEtac-dhaB-tac-yqhD)进行种子培养和发酵时培养基所含硫酸卡那霉素的最低浓度为30 mg/L,获得Klebsiella pneumoniae和Klebsiella pneumoniae (pEtac-dhaB-tac-yqhD)在种子培养基和发酵培养基中的生长曲线。摇瓶发酵结果显示,Klebsiella pneumoniae (pEtac-dhaB-tac-yqhD)比野生Klebsiella pneumoniae的乙醇含量略有提高,提高幅度为9.5%,乙酸含量下降了26.5%,而丁二醇含量更是下降了34.0%,主产物1,3-PD提高了25%。乙酸,乙醇和1,3-PD均在反应进行7 h左右开始大量生成,而丁二醇则要在第20 h左右才开始大量生成。进一步在5 L发酵罐上进行发酵试验,结果表明发酵培养较适宜的搅拌转速和通气量采用两段控制,第一阶段转速控制为200 r/min,通空气条件为2.0 vvm,7h后转速和通气量分别降为100 r/min和1.0 vvm。控制pH恒为7.0对重组Klebsiella pneumoniae(pEtac-dhaB-tac-yqhD)的发酵有利。
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