耐辐射球菌deinoxanthin代谢关键酶CrtI和逆境压力保护蛋白Dps-2鉴定与功能研究

耐辐射球菌deinoxanthin代谢关键酶CrtI和逆境压力保护蛋白Dps-2鉴定与功能研究

论文摘要

耐辐射球菌(Deinococcus radiodurans,简称DR)是地球上辐射抗性最强的生物之一,它以对电离辐射和干燥等表现强耐受力而著称。已有研究显示,DR菌极端生存能力是其保护、耐受和修复三方面协同作用的结果,而高效的抗氧化机制和DNA损伤修复是当前研究热点。最新研究认为,电离辐射产生的DNA损伤约80%由辐射水解产生的活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)攻击而间接导致,这表明抗氧化损伤保护机制在DR菌中可能扮演重要角色。因此,鉴定和研究DR菌中高效抗氧化物质,对阐明抗氧化保护机制在DR菌中的贡献及解释其极端抗性机制具有重要意义。类胡萝卜素能高效猝灭单线态氧(1O2),并清除多种ROS对生物体造成的伤害。DR菌体内大量合成以deinoxanthin为主要产物的类胡萝卜素,但至今尚缺乏对它们在DR菌中的功能及其代谢的分子机理进行深入的研究。本文主要对deinoxanthin等类胡萝卜素功能及其合成酶CrtI进行鉴定和分析。研究结果如下:1.以高效液相色谱(HPLC)和薄层层析(TLC)方法分离获得高纯度deinoxanthin色素。化学发光法和体外Fenton反应分析deinoxanthin抗氧化能力,结果表明deinoxanthin具有比lycopene和β-carotene更高效的1O2和H2O2清除能力,能有效保护质粒DNA并降低其氧化损伤程度。2.生物信息学方法筛选基因组获得控制deinoxanthin合成的关键蛋白DR0861,蛋白N-端和C-端分别具有保守βαβ折叠Motif和八氢番茄红素脱氢酶(PDS)信号序列。DR0861全基因敲除和N-端功能域(19-69aa)缺失均导致红色DR菌变为无色菌株,HPLC显示DR菌deinoxanthin等类胡萝卜素随DR0861突变而消失,而欧文氏菌(E.uredovora)crtI基因补偿可以使无色突变株恢复颜色。表明DR0861基因参与了DR菌中deinoxanthin的代谢路径,具有催化合成有色类胡萝卜素功能。DR0861缺失影响突变株对γ射线和H2O2抗性,导致细胞提取物对1O2和H2O2清除能力降低。表明DR0861蛋白催化合成的类胡萝卜素参与了DR菌体内的抗氧化保护体系,可能对其极端抗性机制有重要贡献。3.大肠杆菌(E.coli)过表达和纯化获得DR0861蛋白,体内和体外生化反应产物HPLC分析显示,DR0861能通过多步脱氢反应,催化无色八氢番茄红素(phytoene)底物生成红色的番茄红素(lycopene)产物,表明DR菌DR0861基因编码CrtI类型而非CrtP/Q型PDS。通过对E.coli色素工程菌研究还发现,lycopene等类胡萝卜素的生成可使E.coli产生浅红色,并明显提高E.coli对低剂量电离辐射和H2O2抗性。除研究非酶类抗氧化物(类胡萝卜素)之外,我们还对DR菌抗氧化体系重要组成部分——抗氧化功能蛋白Dps-2进行鉴定和研究。Dps-2(DRB0092)序列含多个赖氨酸保守位点,其N-端前沿包含一段特殊信号肽序列,C-端存在保守亚铁氧化酶(ferroxidase)功能域。dps-2全基因缺失导致DR菌生长受到明显影响,而且细胞对电离辐射、紫外线、干燥和H2O2等均表现敏感,并导致蛋白提取物对自由基清除能力降低。E.coli表达和纯化分别获得Dps-2完整蛋白WDps、N-端信号肽突变蛋白N30Dps和C-端ferroxidase突变蛋白C20Dps。SDS-PAGE结果表明,三种蛋白均能形成多聚体,但产生高聚体的比例受盐离子浓度等影响;信号肽突变提高N30Dps对不同温度(37-60℃)的热稳定性,而C-端结构域缺失导致C20Dps蛋白活性对温度异常敏感。Native-PAGE活性染色和亚铁氧化动力学结果表明,WDps和N30Dps蛋白具有催化Fe2+生成Fe3+功能,而C20Dps亚铁氧化酶活性完全丧失。体外DNA结合和Fenton反应结果显示,突变蛋白C20Dps不具有DNA结合功能,不能保护DNA免受自由基攻击;而N30Dps具有结合DNA的能力,它和WDps均能降低Fenton反应自由基攻击导致的DNA氧化损伤。综上所述,耐辐射球菌DR0861基因编码CrtI类型PDS,它以phytoene为底物,在DR菌体内参与催化合成deinoxanthin。抗氧化保护蛋白Dps-2具有亚铁氧化酶活性和非特异DNA结合等功能,催化毒性Fe2+生成无害Fe3+并能结合生成的Fe3+,降低细胞内环境毒性,并与染色体形成致密Dps-DNA复合体,保护DNA降低自由基损伤程度,它与类胡萝卜素等物质共同参与了DR菌体内抗氧化体系,对该菌的极端抗性机制具有重要贡献。

论文目录

  • 致谢
  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略词
  • 1 文献综述
  • 1.1 耐辐射球菌研究进展
  • 1.1.1 耐辐射球菌的特征
  • 1.1.2 耐辐射球菌基因组学研究进展
  • 1.1.3 转录组学和蛋白质组学研究进展
  • 1.1.4 耐辐射球菌极端抗性机制研究进展
  • 1.1.4.1 基因组冗余
  • 1.1.4.2 特殊的染色体结构
  • 1.1.4.3 DNA降解和损伤DNA的外排
  • 1.1.4.4 DNA损伤修复系统
  • 1.1.4.5 高效的抗氧化保护机制
  • 1.1.5 小结与展望
  • 1.1.6 参考文献
  • 1.2 类胡萝卜素功能和微生物中色素合成酶研究综述
  • 1.2.1 类胡萝卜素功能研究进展
  • 1.2.1.1 β-胡萝卜素(β-carotene)
  • 1.2.1.2 番茄红素(lycopene)
  • 1.2.2 微生物体内类胡萝卜素合成酶研究进展
  • 1.2.2.1 GGPP合成酶(GGPS)
  • 1.2.2.2 八氢番茄红素合成酶(PSY)
  • 1.2.2.3 八氢番茄红素脱饱和酶(PDS)
  • 1.2.3 小结与展望
  • 1.2.4 参考文献
  • 1.3 逆境压力保护蛋白Dps的研究综述
  • 1.3.1 DNA结合功能研究
  • 1.3.2 铁氧化酶和金属离子结合活性
  • 1.3.3 Dps蛋白的调控机理研究
  • 1.3.4 小结与展望
  • 1.3.5 参考文献
  • 2 耐辐射球菌deinoxanthin色素功能及其合成酶CrtI研究
  • 2.1 耐辐射球菌类胡萝卜素deinoxanthin的分离和功能研究
  • 2.1.1 前言
  • 2.1.2 材料和方法
  • 2.1.2.1 菌株、试剂和仪器
  • 2.1.2.2 类胡萝卜素deinoxanthin的提取和鉴定
  • 2.1.2.3 类胡萝卜素deinoxanthin的分离纯化
  • 2.1.2.4 deinoxanthin自由基清除能力分析
  • 2.1.2.5 deinoxanthin体外DNA保护功能分析
  • 2.1.3 结果与分析
  • 2.1.3.1 耐辐射球菌类胡萝卜素分析
  • 2.1.3.2 耐辐射球菌deinoxanthin分离和纯化
  • 2.1.3.3 deinoxanthin自由基清除能力分析
  • 2.1.3.4 deinoxanthin体外DNA保护功能鉴定
  • 2.1.4 小结与讨论
  • 2.1.5 参考文献
  • 2.2 耐辐射球菌类胡萝卜素合成酶的生物信息学分析
  • 2.2.1 引言
  • 2.2.2 材料和方法
  • 2.2.2.1 数据来源
  • 2.2.2.2 研究方法
  • 2.2.3 结果与分析
  • 2.2.3.1 DR0861序列特征分析
  • 2.2.3.2 基因密码子偏好性分析
  • 2.2.3.3 DR861基因启动子预测
  • 2.2.3.4 DR0861蛋白结构域搜索和分析
  • 2.2.3.5 多序列同源比对和活性位点分析
  • 2.2.3.6 DR0861蛋白进化树构建和分析
  • 2.2.4 小结与讨论
  • 2.2.5 参考文献
  • 2.3 耐辐射球菌DR0861基因功能研究
  • 2.3.1 引言
  • 2.3.2 材料和方法
  • 2.3.2.1 供试菌株、试剂和仪器
  • 2.3.2.2 突变株的构建和转化
  • 2.3.2.3 补偿菌株和过表达菌株的构建
  • 2.3.2.4 高效液相色谱(HPLC)分析
  • 2.3.2.5 光照对菌落生长影响
  • 60Co电离辐射处理'>2.3.2.660Co电离辐射处理
  • 2O2)处理'>2.3.2.7 过氧化氢(H2O2)处理
  • 2.3.2.8 过氧化氢酶(catalase)活性染色检测
  • 2.3.2.9 细胞蛋白提取物抗氧化能力检测
  • 2.3.3 结果与分析
  • 2.3.3.1 DR0861突变株构建和鉴定
  • 2.3.3.2 补偿和过表达菌株的鉴定
  • 2.3.3.3 DR0861基因突变对类胡萝卜素代谢的影响
  • 2.3.3.4 DR0861基因缺失影响细胞生长
  • 2.3.3.5 电离辐射处理对菌体存活率影响
  • 2O2处理对菌体生存率影响'>2.3.3.6 H2O2处理对菌体生存率影响
  • 2.3.3.7 DR0861缺失对过氧化氢酶活性的影响
  • 2.3.3.8 DR0861突变对细胞自由基清除能力的影响
  • 2.3.4 小结与讨论
  • 2.3.5 参考文献
  • 2.4 耐辐射球菌类胡萝卜素合成酶DR0861生化功能研究
  • 2.4.1 引言
  • 2.4.2 材料和方法
  • 2.4.2.1 菌株和质粒
  • 2.4.2.2 试剂和仪器
  • 2.4.2.3 基因克隆和表达质粒构建
  • 2.4.2.4 DR0861蛋白表达
  • 2.4.2.5 DR0861目的蛋白纯化
  • 2.4.2.6 DR0861蛋白体外活性分析
  • 2.4.2.7 大肠杆菌双质粒共表达工程菌的构建
  • 2.4.2.8 大肠杆菌工程菌类胡萝卜素的合成分析
  • 2.4.2.9 大肠杆菌体内类胡萝卜素的功能研究
  • 2.4.3 结果与分析
  • 2.4.3.1 DR0861表达质粒鉴定
  • 2.4.3.2 DR0861蛋白表达和纯化
  • 2.4.3.3 DR0861蛋白体内催化活性鉴定
  • 2.4.3.4 DR0861蛋白体外脱氢酶活性分析
  • 2.4.3.5 工程菌体内类胡萝卜素功能研究
  • 2.4.3.6 大肠杆菌体内类胡萝卜素定量分析
  • 2.4.4 小结与讨论
  • 2.4.5 参考文献
  • 3 耐辐射球菌逆境保护蛋白Dps-2的鉴定和功能研究
  • 3.1 耐辐射球菌Dps-2生物信息学分析
  • 3.1.1 引言
  • 3.1.2 材料和方法
  • 3.1.3 结果与分析
  • 3.1.3.1 序列特征分析
  • 3.1.3.2 Dps-2蛋白结构域分析
  • 3.1.3.3 多序列同源比对
  • 3.1.3.4 Dps-2蛋白进化分析
  • 3.1.4 小结与讨论
  • 3.1.5 参考文献
  • 3.2 耐辐射球菌dps-2基因功能分析
  • 3.2.1 引言
  • 3.2.2 材料与方法
  • 3.2.2.1 菌株和质粒
  • 3.2.2.2 实验仪器
  • 3.2.2.3 dps单突变和双突变菌株构建
  • 3.2.2.4 补偿菌株构建
  • 3.2.2.5 菌株生长曲线测定
  • 3.2.2.6 逆境压力处理方法
  • 3.2.2.7 细胞内金属离子含量测定
  • 3.2.2.8 过氧化氢酶(catalase)活性检测
  • 3.2.2.9 细胞抗氧化能力检测
  • 3.2.3 结果与分析
  • 3.2.3.1 dps基因突变株的鉴定
  • 3.2.3.2 补偿质粒的鉴定
  • 3.2.2.3 dps-2基因缺失影响细胞生长
  • 3.2.3.4 逆境压力影响细胞生存率
  • 3.2.3.5 dps-2缺失影响细胞过氧化氢酶活性
  • 3.2.3.6 dps-2突变降低细胞自由基清除能力
  • 3.2.3.7 dps-2缺失对细胞内金属含量的影响
  • 3.2.4 小结与讨论
  • 3.2.5 参考文献
  • 3.3 耐辐射球菌Dps-2蛋白生化特性研究
  • 3.3.1 引言
  • 3.3.2 材料与方法
  • 3.3.2.1 菌株、质粒和试剂
  • 3.3.2.2 基因克隆、表达与纯化
  • 3.3.2.3 Dps-2蛋白热稳定性分析
  • 3.3.2.4 Dps-2多聚体形态分析
  • 3.3.2.5 Dps-2亚铁氧化酶(ferroxidase)活性分析
  • 3.3.2.6 Dps-2蛋白促铁代谢动力学分析
  • 3.3.2.7 体外DNA结合能力分析
  • 3.3.2.8 体外DNA保护功能分析
  • 3.3.3 实验结果与分析
  • 3.3.3.1 表达质粒鉴定
  • 3.3.3.2 Dps-2表达和纯化
  • 3.3.3.3 温度对Dps-2蛋白稳定性影响
  • 3.3.3.4 Dps-2蛋白多聚体形态鉴定
  • 3.3.3.5 亚铁氧化酶(ferroxidase)活性染色鉴定
  • 3.3.3.6 Dps-2蛋白促铁氧化动力学分析
  • 3.3.3.7 Dps-2蛋白DNA结合功能分析
  • 3.3.3.8 体外DNA保护功能分析
  • 3.3.4 小结与讨论
  • 3.3.5 参考文献
  • 4 结论
  • 作者简历和科研成果
  • 相关论文文献

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