论文摘要
1、采用寇氏(Korbor)法研究了Cu2+和Cd2+对梨形环棱螺(Bellamyapurificata)96h的急性毒性,结果表明:Cu2+、Cd2+对B.purificata 96h的LC50及其95%致信区间分别为0.382(0.314-0.464)mg/L、3.390(2.819-4.076)mg/L。2、采用暴露重金属的方法,研究了不同浓度硫酸铜(Cu2+分别为0 mg/L、0.005 mg/L、0.01 mg/L、0.02 mg/L、0.05 mg/L)在不同暴露时间0—10d下对梨形环棱螺肝脏和鳃组织线粒体ROS含量,0—14d下对梨形环棱螺CAT、SOD、GST的活性、GSH和MT含量以及DNA单链断裂程度的影响,结果表明:Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃中ROS、CAT、SOD、GST、GSH、MT和DNA断裂均有明显影响,表现出时间剂量效应。ROS水平随暴露时间和剂量表现出升高的趋势,显示出明显的时间剂量效应。SOD在前4 d、CAT在前3 d酶活性总体上表现出诱导趋势,GST在前4 d酶活性处于诱导状态,随着暴露时间的延长,酶活性下降,表现出抑制趋势;随着时间的进一步增长,至14 d时,0.005 mg/L剂量组酶活性维持在正常值附近波动,0.05 mg/L剂量组酶活性被抑制,0.01 mg/L剂量组酶活性被诱导,0.02mg/L剂量组酶活性在肝脏中表现为诱导而在鳃中则被抑制。肝脏和鳃GSH含量的变化与GST相似,在短时间内表现出诱导效应,肝脏GSH在暴露的前5d均处于诱导状态,鳃GSH在暴露的前4d均处于诱导状态,随着暴露时间的延长,0.005 mg/L剂量组表现出诱导,0.05 mg/L剂量组则受到抑制。MT在整个实验期间均处于诱导状态。肝脏和鳃组织DNA单链断裂程度随Cu2+暴露剂量和暴露时间而显著增加。暴露于Cu2+后1d后,F值迅速降低,随后,F值有所上升,提示损伤后DNA表现出一定程度的修复,在第2d时的F值达到较高点;随后DNA单链断裂程度继续加重,F值表现出持续下降的趋势。肝脏组织在第10-14d时,0.005、0.01、0.02和0.05剂量组间F值没有显著差异。3、采用暴露重金属的方法,研究了不同浓度氯化镉(Cd2+分别为0 mg/L、0.05 mg/L、0.10 mg/L、0.20 mg/L、0.50 mg/L)在不同暴露时间(0—14d)下对梨形环棱螺过氧化氢酶CAT、SOD、GST的活性、GSH和MDA含量的影响。结果表明:Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃中CAT、SOD、GST、GSH和MDA均有明显影响,表现出时间剂量效应。肝脏SOD活性在前10 d处于诱导状态;0.05、0.10和0.20剂量组鳃组织中的SOD活性一直处于诱导状态。0.05和0.10剂量组肝脏CAT在暴露的前7d活性被诱导,然后活性下降;0.20和0.50剂量组在第2d时酶活性显著升高,随后酶活性一直下降直至第10d活性极显著被抑制;鳃组织中的各剂量组CAT在暴露的前7d处于诱导状态(0.50剂量组第4d除外),然后酶活性急剧下降,在第10-14d酶活性被极显著抑制。0.05和0.10剂量组肝脏GST活性一直处于诱导状态;0.20剂量组在前7d处于显著或极显著诱导状态;0.50剂量组在第1d时已被极显著地诱导,随后下降。鳃组织中的GST变化趋势与肝脏中的相似。各剂量组在前5d处于诱导状态,从第7d后酶活性快速下降,在第10-14d时酶活性被抑制。肝脏和鳃中各剂量组GSH在前7d一直处于显著或极显著诱导状态(0.50剂量组肝脏第1d和鳃第4d除外),在第10d时酶活性都有一个下降过程,然后酶活性回升,至第14d均高于对照组。肝脏组织中的MDA含量在暴露的前1d内下降,随后MDA含量上升,直至第4d上升到最高值。然后MDA含量开始回落。鳃组织中0.20和0.50剂量组MDA含量在第2d达到峰值、0.05和0.10剂量组在第4d达到峰值后下降,中间出现波动,到第14d时与对照组无显著差异。肝脏和鳃组织中DNA单链断裂程度增加(表现为F值的降低)。肝脏在暴露的前4d内,F值下降,鳃组织在暴露的第1d时,DNA损伤显著或极显著,随后F值上升,显示断裂的DNA有一定程度的修复,然后DNA单链断裂程度继续加重,F值持续下降,直至第14d。
论文目录
摘要Abstract缩略语表第一章 文献综述1.1 水环境重金属污染的状况1.2 水生动物对重金属的吸收和积累1.3 重金属在水生动物体内的生物转化与消除1.4 影响重金属毒性的理化因素1.5 水环境重金属的生物监测1.6 重金属的生物标志物1.6.1 重金属对活性氧自由基的影响1.6.2 重金属对金属硫蛋白的诱导作用1.6.3 重金属对抗氧化系统的诱导作用1.6.4 重金属对谷胱甘肽硫转移酶的诱导作用1.6.5 重金属对还原性谷胱甘肽(GSH)的影响1.6.6 重金属对脂质过氧化的影响1.6.7 重金属的遗传毒性——DNA损伤1.7 重金属对腹足类的生态毒理效应1.8 本研究的目的和意义2+和Cd2+对梨形环棱螺的急性毒性及安全浓度评价'>第二章 Cu2+和Cd2+对梨形环棱螺的急性毒性及安全浓度评价2.1 材料与方法2.1.1 实验材料2.1.2 实验试剂2.1.3 急性毒性实验方法2.1.4 数据处理方法2.2 实验结果2.3 讨论2+对梨形环棱螺毒理效应的研究'>第三章 Cu2+对梨形环棱螺毒理效应的研究3.1 材料与方法3.1.1 实验材料3.1.2 主要仪器和试剂3.1.3 实验方法3.1.4 酶样的制备3.1.5 线粒体样品的制备3.1.6 抗氧化酶活性的测定3.1.7 GSH的测定3.1.8 MT的测定3.1.9 ROS的测定3.1.10 DNA链断裂测定3.1.11 数据处理方法3.2 实验结果2+对梨形环棱螺肝脏和鳃线粒体ROS含量的影响'>3.2.1 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃线粒体ROS含量的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃SOD活性的影响'>3.2.2 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃SOD活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃CAT酶活性的影响'>3.2.3 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃CAT酶活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GST酶活性的影响'>3.2.4 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GST酶活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GSH变化的影响'>3.2.5 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GSH变化的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃MT的影响'>3.2.6 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃MT的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA单链断裂的影响'>3.2.7 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA单链断裂的影响3.3 讨论2+对梨形环棱螺肝脏和鳃线粒体ROS含量的影响'>3.3.1 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃线粒体ROS含量的影响2+对梨形环棱螺抗氧化酶活性的影响'>3.3.2 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺抗氧化酶活性的影响2+对梨形环棱螺谷胱甘肽系统的影响'>3.3.3 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺谷胱甘肽系统的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃组织MT含量的影响'>3.3.4 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺肝脏和鳃组织MT含量的影响2+对梨形环棱螺DNA损伤的影响'>3.3.5 不同浓度Cu2+对梨形环棱螺DNA损伤的影响3.3.6 抗氧化指标间的相互关系3.4 小结2+对梨形环棱螺毒理效应的研究'>第四章 Cd2+对梨形环棱螺毒理效应的研究4.1 材料与方法4.1.1 实验材料4.1.2 主要仪器和试剂4.1.3 实验方法4.1.4 酶样的制备4.1.5 抗氧化酶活性的测定4.1.6 GSH的测定4.1.7 MDA的测定4.1.8 DNA单链断裂测定4.1.9 数据处理方法4.2 实验结果2+对梨形环棱螺肝脏和鳃SOD活性的影响'>4.2.1 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃SOD活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃CAT活性的影响'>4.2.2 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃CAT活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GST活性的影响'>4.2.3 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GST活性的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GSH含量的影响'>4.2.4 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃GSH含量的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃MDA含量的影响'>4.2.5 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃MDA含量的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA单链断裂的影响'>4.2.6 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA单链断裂的影响4.3 讨论2+对梨形环棱螺肝脏和鳃抗氧化酶活性的影响'>4.3.1 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃抗氧化酶活性的影响2+对梨形环棱螺谷胱甘肽系统的影响'>4.3.2 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺谷胱甘肽系统的影响2+对梨形环棱螺脂质过氧化的影响'>4.3.3 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺脂质过氧化的影响2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA损伤的影响'>4.3.4 不同浓度Cd2+对梨形环棱螺肝脏和鳃DNA损伤的影响4.4 小结全文结论参考文献致谢附录《水生生物学报》稿件录用通知书
相关论文文献
标签:氧化胁迫论文; 损伤论文; 毒理效应论文; 梨形环棱螺论文;