水牛乳中β-乳球蛋白的IgG结合表位的定位研究

水牛乳中β-乳球蛋白的IgG结合表位的定位研究

论文摘要

牛乳过敏是一种常见的食物过敏反应,约1%~2%的成人和高达8%的三岁以下儿童会对牛乳产生食物过敏反应。β-乳球蛋白是公认的主要乳过敏原之一,大约82%的牛乳过敏患者对β-乳球蛋白过敏。由于牛乳β-乳球蛋白与水牛乳β-乳球蛋白的同源性很高,存在免疫交叉反应。因此,探索水牛乳β-乳球蛋白的过敏问题具有重要的价值。本论文开展的研究工作包括水牛乳β-乳球蛋白的分离纯化、兔抗水牛乳β-乳球蛋白的抗原性评估、水牛乳β-乳球蛋白线性表位和构象型表位的定位,研究的主要方法、结果及结论如下:1.水牛乳乳清经过柱层析的分离后,采用SDS-PAGE、IEF-PAGE和ESI-Q-TOF-MS等方法对对分离组分进行鉴定。结果表明,本研究建立的DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换结合Sephadex G-75凝胶层析方法可以分离纯化水牛乳β-乳球蛋白,该方法分离得到的水牛乳β-乳球蛋白的抗原性完整,纯度高达90%以上,并且适用于实验室小量和中量制备。2.以纯化的水牛乳β-乳球蛋白为抗原,按常规的免疫程序对日本大白耳兔进行免疫,间接非竞争ELISA检测结果表明,日本大白耳兔对纯化的水牛乳β-乳球蛋白具有很好的免疫应答。通过间接ELISA、竞争抑制ELISA以及免疫印迹实验,结果表明本研究分离纯化的水牛乳β-乳球蛋白的抗原性完好,并证明了水牛乳β-乳球蛋白与牛乳β-乳球蛋白存在较强的免疫交叉反应,交叉率达到69.27%。3.根据亲和层析原理,将纯化的水牛乳β-乳球蛋白耦联到溴化氰活化的Sepharose4B的免疫亲合柱上,用3mol/L MgCl2将特异性兔血清IgG抗体洗脱,得到了SDS-PAGE纯的IgG,其蛋白含量可达5.8mg/mL,经ELISA检测抗体效价滴度为1:109。因此,本研究建立的方法可用于纯化兔血清中特异性的IgG抗体。4.通过生物信息学分析,借助LaserGene软件和网络服务器,分别按Kyte-Doolittle方案预测水牛乳β-乳球蛋白的亲水性区、Jameson-Wolf方案评估蛋白质的抗原性指数的高低、Emini方案寻找其表面可及性的位点,同时分别对其二级结构的柔韧性区域、转角和无规则卷曲的易形成区进行预测,最后对以上多参数综合分析,预测出了5个可能含有多个线性表位的区域:AA30-45,AA67-78,AA97-115,AA124-141,AA150-156。5.通过采用特异性兔血清对噬菌体随机七肽库进行亲和淘选,在随机挑选的300个克隆子中,筛选到了99个阳性克隆子,借助网络工具MIMOX分析,定位出了水牛乳β-乳球蛋白的6个模拟表位区:AA14-20,AA26-32,AA36-42,AA70-80,AA82-86以及AA149-156,其中AA70-80和AA149-156为主要表位区。6.在表位预测和噬菌体肽库筛选的基础上,采用肽扫描定位的方法,寻找到了水牛乳β-乳球蛋白的兔血清IgG结合的7个线性表位,它们分别是AA21-30(SLAMAASDIS)AA25-34(AASDISLLDA)、AA29-38(ISLLDAQSAP)、AA77-86(KIPAVFKIDA)、AA87-96(LNENKVLVLD)、AA134-143(EKFDKALKAL)和AA150-159(AFNPTQLEGQ)。7.表位预测与表位筛选结果表明,30%的预测表位区出现在肽库筛选的模拟表位中,而40%筛选的表位区未能通过生物信息学的方法预测到。与已报道的牛乳β-乳球蛋白的IgG结合表位相比,本研究发现了两个兔血清IgG结合的新表位,它们分别是AA134-143(EKFDKALKAL)和AA150-159(AFNPTQLEGQ)。8.通过对噬菌体环七肽库的淘选,筛选到了水牛乳β-乳球蛋白的兔血清IgG结合的构象型模拟肽,以此为基础,借助生物信息学的分析,定位出了水牛乳β-乳球蛋白的兔血清IgG结合的2个构象型表位:Ser-Pro-Leu-Thr-Glu-Asn-Lys和Pro-Leu-Asn-Glu-Asn-Lys-Asn。9.建立了噬菌体环七肽库筛选组合网络工具MIMOX定位构象型表位的方法,该方法可以应用于食物过敏原的构象型表位定位。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 引言
  • 1.1 水牛乳的研究进展
  • 1.1.1 水牛乳的特点及优势
  • 1.1.2 水牛乳业发展概况
  • 1.1.3 水牛乳的过敏问题
  • 1.2 牛乳中的主要过敏原表位的研究进展
  • 1.2.1 表位的免疫学意义
  • 1.2.2 牛乳过敏原表位研究概况
  • 1.2.3 牛乳过敏原线性表位序列位置的特异性以及构象型表位对比
  • 1.2.4 牛乳过敏原表位定位及应用
  • 1.3 研究内容和意义
  • 第二章 水牛乳β-乳球蛋白的分离纯化
  • 2.1 引言
  • 2.2 材料与设备
  • 2.2.1 试剂与材料
  • 2.2.2 仪器
  • 2.2.3 溶液的配制
  • 2.3 实验方法
  • 2.3.1 水牛乳的预处理
  • 2.3.2 除酪蛋白
  • 2.3.3 超滤
  • 2.3.4 水牛乳β-乳球蛋白的分离
  • 2.3.5 分离蛋白的纯度检测
  • 2.3.6 蛋白质含量的测定
  • 2.3.7 质谱鉴定
  • 2.4 结果
  • 2.4.1 离子交换层析分离水牛乳β-乳球蛋白
  • 2.4.2 凝胶层析分离水牛乳β-乳球蛋白的结果
  • 2.4.3 蛋白分离过程中样品蛋白含量的变化
  • 2.4.4 离子交换层析及凝胶层析分离水牛乳β-乳球蛋白的得率
  • 2.4.5 水牛乳β-乳球蛋白的鉴定结果
  • 2.5 讨论
  • 2.5.1 层析纯化分离目的蛋白
  • 2.5.2 关于SDS-PAGE、IEF-PAGE检测蛋白的纯度
  • 2.6 小结
  • 第三章 水牛乳β-乳球蛋白的抗原性评估和特异性抗体的纯化
  • 3.1 引言
  • 3.2 材料与设备
  • 3.2.1 试剂
  • 3.2.2 实验动物
  • 3.2.3 仪器与耗材
  • 3.2.4 溶液配制
  • 3.3 方法
  • 3.3.1 多抗的制备
  • 3.3.2 抗原性评价
  • 3.3.3 亲和层析纯化特异性IgG
  • 3.3.4 SDS-PAGE电泳检测纯度
  • 3.4 结果
  • 3.4.1 实验动物免疫应答的变化
  • 3.4.2 免疫交叉反应的测定结果
  • 3.4.3 亲和层析洗脱过程中蛋白含量变化
  • 3.5 讨论
  • 3.5.1 多抗的制备
  • 3.5.2 抗原性评估
  • 3.5.3 亲和层析纯化抗体
  • 3.6 小结
  • 第四章 水牛乳β-乳球蛋白的IgG结合的线性表位定位
  • 4.1 前言
  • 4.2 材料
  • 4.2.1 试剂
  • 4.2.2 仪器
  • 4.2.3 试剂配方
  • 4.3 方法
  • 4.3.1 水牛乳β-乳球蛋白线性表位的预测
  • 4.3.2 噬菌体随机肽库定位线性模拟表位
  • 4.3.3 肽扫描表位定位操作程序
  • 4.4 结果与分析
  • 4.4.1 水牛乳β-乳球蛋白抗原表位的预测结果
  • 4.4.2 肽库淘选模拟线性表位结果
  • 4.4.3 肽扫描表位定位分析结果
  • 4.5 讨论
  • 4.5.1 关于表位预测
  • 4.5.2 噬菌体展示技术在表位筛选中的应用
  • 4.5.3 关于肽扫描表位定位
  • 4.5.4 随机肽库和肽扫描相结合的表位定位分析
  • 4.5.5 水牛乳β-乳球蛋白和牛乳β-乳球蛋白线性表位的比较
  • 4.6 小结
  • 第五章 水牛乳β-乳球蛋白的IgG结合的构象型表位定位
  • 5.1 前言
  • 5.2 材料
  • 5.2.1 材料
  • 5.2.2 仪器
  • 5.2.3 试剂配方
  • 5.3 方法
  • 5.3.1 噬菌体滴度的测定
  • 5.3.2 环七肽库淘选程序
  • 5.3.3 测序模板的快速纯化
  • 5.3.4 ELISA筛选阳性克隆
  • 5.3.5 MIMOX模拟构象型表位
  • 5.4 结果
  • 5.4.1 肽库筛选结果
  • 5.4.2 DNA电泳图
  • 5.4.3 测序结果
  • 5.4.4 网络工具MIMOX对模拟肽共有序列的分析
  • 5.4.5 水牛乳β-乳球蛋白构象型表位
  • 5.4.6 水牛乳β-乳球蛋白构象型表位定位结果
  • 5.4.7 水牛乳β-乳球蛋白构象型表位定位
  • 5.5 讨论
  • 5.5.1 随机环七肽库筛选构象型模拟表位
  • 5.5.2 构象型表位定位方法
  • 5.6 小结
  • 第六章 结论与展望
  • 6.1 结论
  • 6.2 本研究的创新点
  • 6.3 展望与建议
  • 致谢
  • 参考文献
  • 攻读学位期间的研究成果
  • 相关论文文献

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