血管活性肠肽对高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的调控及其STAT3信号机制

血管活性肠肽对高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的调控及其STAT3信号机制

论文摘要

第一部分高氧暴露对肺泡Ⅱ型上皮细胞存活的影响目的研究高氧诱导的AECⅡ损伤、死亡情况及高氧暴露后细胞增殖的变化,从而了解高氧对AECⅡ存活的影响。方法将MLE-12细胞暴露于>90%体积分数的氧制备高氧损伤模型,在高氧暴露不同时点利用Annexin V/PI双标记流式细胞仪检测细胞早期凋亡、晚期凋亡及坏死,酶标仪检测凋亡相关蛋白caspase-3活性,DAPI染色荧光显微镜观察细胞核及核内染色质形态,透射电镜观察线粒体超微结构的改变、流式细胞仪检测线粒体膜电位变化以了解高氧对线粒体结构及功能的损害, MTT法及细胞周期检测反映高氧状态下的MLE-12细胞增殖情况。结果Annexin V/PI双标记流式细胞仪检测结果显示高氧暴露0.5 h,1 h,2 h,4 h细胞早期凋亡、晚期凋亡及坏死率与空气对照组相比无显著差异,高氧暴露后6 h细胞早期凋亡、晚期凋亡及坏死率明显增加(p < 0.01),高氧暴露后12 h、24 h更多细胞发生早期凋亡、晚期凋亡及坏死(p < 0.01),且发生死亡的细胞大部分集中于代表晚期凋亡及坏死的右上象限。酶标仪检测caspase-3活性结果显示与空气对照组比较,高氧暴露后0.5 h,1 h,2 h,4 h,6 h,12 h,24 h各组OD405nm无显著差异。DAPI染色荧光显微镜观察,与空气对照组比较,高氧暴露0.5 h,1 h,2 h,4 h细胞核及染色质形态未见明显变化,胞核呈圆形,边缘清晰,染色均匀,高氧暴露6 h,12 h,24 h细胞核肿胀,体积变大,未见核固缩及染色质聚集现象。JC-1染色流式细胞仪分析及荧光显微镜观察,与空气对照组相比,高氧暴露0.5 h,1 h,2 h,4 h线粒体膜电位无明显变化,高氧暴露后6 h,12 h,24 h,随暴露时间延长,线粒体膜电位下降趋势愈发明显(p < 0.01)。透射电镜观察发现,高氧暴露后线粒体发生肿胀,内膜及外膜均遭到破坏。MTT结果显示,与同时点空气对照组相比,高氧暴露0.5 h,1 h,2 h,4 h细胞OD490nm值无显著变化,高氧暴露6 h,12 h,24 h随暴露时间延长OD490nm值降低趋势越为明显(p<0.01)。细胞周期分析显示高氧暴露0.5 h,1 h,2 h,4 h G)0/G1、S、G2/M各期细胞比例与空气对照组相比无显著差异,大部分细胞分布于S及G2/M期即DNA合成及分裂期,高氧暴露6 h,12 h,24 h G0/G1期细胞比例明显增加(p<0.01),而S期、G2/M比例显著降低(p<0.01),大部分细胞分布于G0/G1期即静止期及DNA合成前期。结论高氧可以时间依赖性的方式诱导AECⅡ损伤及死亡,抑制AECⅡ增殖,从而使得AECⅡ存活减少。>90%氧体积分数的高氧暴露后,AECⅡ表现为细胞膜的破坏、细胞核及线粒体的肿胀等胀亡的特征,而磷脂酰丝氨酸外翻、核固缩、染色质聚集、凋亡相关蛋白酶活化等凋亡特征不明显。第二部分血管活性肠肽对高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的影响目的研究VIP干预后高氧暴露的AECⅡ损伤、死亡情况及细胞增殖的变化,从而了解VIP对高氧损伤后AECⅡ再生修复的影响。方法MLE-12细胞进行高氧暴露及VIP干预,MTT法及细胞周期检测细胞增殖,了解VIP对高氧暴露细胞增殖的影响,流式细胞仪检测线粒体膜电位的变化,Annexin V/PI双标记流式细胞学检测细胞早期凋亡、晚期凋亡及坏死,DAPI染色荧光显微镜观察细胞核及核内染色质形态,了解VIP对高氧诱导的细胞死亡的影响。结果MTT结果显示,与空气对照组相比,高氧组氧暴露后24 h,MLE-12细胞OD490nm值显著降低(p<0.05),高氧VIP各浓度组与高氧组比较,随加入的VIP终浓度由10-9至10-6M升高,OD490nm值亦渐升高,高氧VIP10-7M组与高氧VIP10-10M组、高氧VIP10-9M组、高氧VIP10-8M组比较,OD490nm值差异有显著性(p<0.01)。Annexin-V/PI双标记流式细胞仪检测结果显示,高氧VIP10-7M组细胞早期凋亡率、晚期凋亡及坏死率与单纯高氧暴露组相比明显降低( p <0.01),但仍高于空气对照组,VIP干预后死亡的细胞仍大部分分布于代表晚期凋亡及坏死的右上象限。JC-1染色流式细胞仪分析显示,与单纯高氧组相比,高氧VIP10-7M组线粒体膜电位下降幅度减少(p< 0.01)。DAPI染色荧光显微镜下观察,VIP干预后高氧暴露的MLE-12细胞仍可见增大的胞核,而无核固缩及染色质聚集。流式细胞学细胞周期检测结果发现,高氧VIP10-7M组与单纯高氧组比较,G0/G1期细胞比例明显减少(p<0.01),S期、G2/M期比例显著增高(p<0.01),但两者均未达空气对照组水平。结论VIP可以剂量依赖性的方式促进高氧暴露的AECⅡ的增殖,减轻高氧暴露对细胞增殖的抑制作用,同时VIP通过稳定线粒体功能,减少细胞高氧性损伤及死亡,从而改善高氧暴露后AECⅡ的存活。VIP干预后高氧暴露细胞仍表现出胞膜破坏、胞核肿胀等胀亡的特征,提示VIP可减少高氧诱导的AECⅡ的胀亡,胀亡可能与凋亡一样也是可调控的过程。第三部分血管活性肠肽促进高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的STAT3信号机制目的研究高氧暴露及VIP干预后JAK2/STAT3的活化以及STAT3表达敲低后VIP对高氧暴露AECⅡ增殖、死亡的影响,探讨VIP调控高氧损伤AECⅡ再生修复的可能信号机制。方法Western Blot及凝胶迁移实验(Electrophoretic Mobility Shift Assay, EMSA)检测VIP干预前后高氧暴露的MLE-12细胞JAK2、磷酸化JAK2(p-JAK2),STAT3、磷酸化STAT3(p-STAT3)的表达以及STAT3与DNA结合活性,了解高氧损伤过程中JAK2/STAT3活化情况和VIP对JAK2/STAT3活化影响,RNAi技术敲低MLE-12细胞STAT3表达后采用Annexin V/PI双标记流式细胞学检测细胞死亡、MTT法检测细胞增殖情况,了解STAT3是否介导了VIP对高氧损伤AECⅡ再生修复的调控。结果Western Blot结果显示,在高氧暴露后2 h,p-JAK2蛋白表达增加,4 h达峰值,高氧暴露后6 h表达有所下降,高氧暴露后12 h p-JAK2蛋白表达回复至未干预时水平,与此同时,高氧暴露24 h内的各时点JAK2总蛋白水平并无显著变化,高氧暴露VIP 10-7M组细胞与单纯高氧暴露组细胞相比,24 h内的各检测时间点JAK2总蛋白水平、JAK2发生磷酸化的时点及p-JAK2表达无显著变化。p-STAT3蛋白表达水平在高氧暴露后2 h增加,4 h最强,6 h后有所下降,高氧暴露后12 h p-STAT3蛋白表达与未干预时水平无差异,在p-STAT3表达增强的同时,STAT3总蛋白表达在高氧暴露24 h内各时点无明显差异,10-7M VIP干预后,高氧暴露细胞STAT3总蛋白水平和STAT3磷酸化的时效性均无变化,但p-STAT3表达较单纯高氧暴露组明显增加(p<0.05)。EMSA结果显示,高氧暴露后2 h即可见STAT3 DNA结合活性增加,4 h达峰值,6 h减弱,12 h降至对照组水平,10-7M VIP干预后,高氧暴露细胞中STAT3与DNA结合活性进一步增强(p<0.01)。Annexin-V/PI双标记流式细胞仪检测结果显示,与单纯高氧暴露的未转染组细胞比较,高氧STAT3 siRNA组早期凋亡细胞、晚期凋亡及坏死细胞显著增多(p<0.01),而高氧VIP未转染组早期凋亡细胞及晚期凋亡和坏死细胞显著降低(p<0.01),与高氧VIP未转染组相比,高氧VIP STAT3 siRNA组早期凋亡细胞、晚期凋亡及坏死细胞数明显增加(p<0.05)。MTT结果显示,与高氧未转染组相比,高氧STAT3 siRNA组OD490nm值明显降低(p<0.01),高氧VIP未转染组OD490nm值显著增高(p<0.01),高氧VIP STAT3 siRNA组较之高氧VIP未转染组,OD490nm值明显降低(p<0.01)。结论VIP可通过促进高氧诱导的STAT3的活化,减轻细胞损伤死亡,促进细胞增殖,改善细胞存活,但VIP活化STAT3的过程与经典的JAK2/STAT3途径激活不同,并不影响JAK2的活性。

论文目录

  • 英汉缩略语名词对照
  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 前言
  • 参考文献
  • 第一部分 高氧暴露对肺泡Ⅱ 型上皮细胞存活的影响
  • 1 材料与方法
  • 2 实验结果
  • 3 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 第二部分 血管活性肠肽对高氧损伤肺泡Ⅱ 型上皮细胞再生修复的影响
  • 1 材料与方法
  • 2 实验结果
  • 3 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 第三部分 血管活性肠肽促进高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的STAT3信号机制
  • 1 材料与方法
  • 2 实验结果
  • 3 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 全文总结
  • 文献综述一
  • 参考文献
  • 文献综述二
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻读学位期间文章发表和学术活动
  • 相关论文文献

    • [1].STAT3信号通路在心房颤动中的机制研究[J]. 心血管病学进展 2020(01)
    • [2].STAT3与自噬在胃癌发生发展中的调控关系[J]. 临床消化病杂志 2020(03)
    • [3].STAT3在猪流行性腹泻病毒感染的作用及机制初步探索[J]. 中国兽医杂志 2019(07)
    • [4].IL-6、STAT3在子宫内膜癌中的表达及与临床特征的关系[J]. 癌症进展 2019(22)
    • [5].过表达STAT3对小鼠未成熟树突状细胞分化的影响[J]. 免疫学杂志 2017(06)
    • [6].STAT3在乳腺癌中的表达及临床意义[J]. 实用医学杂志 2017(12)
    • [7].STAT3蛋白表达水平的高低对慢性粒细胞白血病伊马替尼治疗敏感性的影响[J]. 安徽医科大学学报 2017(11)
    • [8].STAT3基因在多形性成胶质细胞瘤中的作用[J]. 解放军预防医学杂志 2017(08)
    • [9].STAT3及其磷酸化蛋白在复发性流产中的作用[J]. 广东医学 2015(23)
    • [10].STAT3和Ki-67在非小细胞肺癌中的表达[J]. 黑龙江医药科学 2016(02)
    • [11].STAT3与子宫内膜癌关系及分子靶向治疗的研究进展[J]. 现代肿瘤医学 2015(13)
    • [12].STAT3与动脉粥样硬化的研究进展[J]. 医学新知 2020(05)
    • [13].白藜芦醇对胶质母细胞瘤作用以及与STAT3信号通路的关系研究[J]. 生命的化学 2017(04)
    • [14].核转录因子STAT3及其在结直肠癌中的应用价值[J]. 中国医科大学学报 2015(01)
    • [15].STAT3及其抑制剂在膀胱癌中的研究进展[J]. 东南大学学报(医学版) 2015(02)
    • [16].STAT3和HIF-1α在食管癌中的表达及临床意义[J]. 实用医学杂志 2015(07)
    • [17].STAT3与雌、孕激素受体在子宫内膜癌中表达的相关性[J]. 实用癌症杂志 2013(06)
    • [18].STAT3与头颈肿瘤的研究进展[J]. 临床医学工程 2014(02)
    • [19].子宫内膜癌组织中STAT3的表达及其与临床病理特征相关性的研究[J]. 中国医学创新 2014(14)
    • [20].子宫内膜癌中STAT3蛋白的表达及临床意义[J]. 现代肿瘤医学 2013(03)
    • [21].STAT3在乳腺浸润性导管癌中表达水平与临床病理特征相关性研究[J]. 中国肿瘤临床 2013(10)
    • [22].STAT3在小细胞肺癌中的表达及对血管生成的影响[J]. 肿瘤药学 2013(03)
    • [23].子宫颈鳞状细胞癌STAT3、bFGF表达与血管新生关系的研究[J]. 现代肿瘤医学 2013(07)
    • [24].STAT3信号分子在创伤弧菌侵入树突状细胞中的作用[J]. 遵义医学院学报 2013(04)
    • [25].STAT3与口腔黏膜癌变的研究进展[J]. 临床口腔医学杂志 2012(10)
    • [26].STAT3基因与MMP-2、MMP-9在乳腺浸润性导管癌中的表达及其相互关系[J]. 中国现代医生 2012(29)
    • [27].胚胎着床过程中的STAT3调控网络[J]. 中国细胞生物学学报 2011(05)
    • [28].STAT3、VEGF基因在新疆哈萨克族食管癌中的表达及其相关性研究[J]. 癌变·畸变·突变 2010(03)
    • [29].STAT3在膀胱移行细胞癌中的表达及临床意义[J]. 数理医药学杂志 2010(03)
    • [30].STAT3与口腔鳞状细胞癌侵袭和转移的关系[J]. 吉林大学学报(医学版) 2010(06)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    血管活性肠肽对高氧损伤肺泡Ⅱ型上皮细胞再生修复的调控及其STAT3信号机制
    下载Doc文档

    猜你喜欢