论文摘要
干细胞衰老学说是迄今解释机体衰老机制的最新学说。随着对干细胞研究的深入,人们认识到干细胞并非是“长生不老”的细胞,所有衰老现象都反映出成体干细胞衰老的水平。研究证明,随着年龄的增长,人或动物大脑内的神经发生率呈指数下降,其原因可能与神经干细胞(Neural stem cells, NSCs)衰老导致的自我更新和多向分化能力衰退有关。因此,深入研究NSCs衰老和延缓NSCs衰老的现代生物学机理,寻找重新激活NSCs的方法和调控它靶向分化对预防和治疗老年退行性疾病有不可估量的社会价值。人参作为中医临床“补气”要药已有2000多年的应用历史,现代药理学研究证明,人参皂苷是人参的主要药效成分,具有广泛的药理作用,人参皂苷Rg1是重要的人参单体皂苷。近年研究认为,人参皂苷Rg1对中枢神经系统有明确的调节作用,具促智和益智功效。也有学者的工作证明,人参皂苷Rg1能够提高体内外神经前体细胞的增殖能力,但其作用机制尚不清楚。本课题前期研究发现人参皂苷Rg1能延缓造血干细胞衰老,其机制与调控p16INK4a-Rb、p19Arf-p53-p21Cip1/Waf1信号转导通路以及延缓端粒长度缩短、提高端粒酶活性有关。迄今还未见关于人参皂苷Rg1对体、内外NSCs衰老相关生物学特征的影响及机制报道。本课题将干细胞最新的研究技术与祖国传统医学的抗衰老理论和对干细胞的认识紧密结合起来,摸索复制NSCs体外衰老模型方法及复制D-半乳糖脑衰老动物模型,并在此基础上从体内和体外两条途径系统探讨人参皂苷单体Rg1延缓NSCs衰老的作用及其可能的生物学调控机制。旨在为探寻延缓NSCs衰老以及重新激活衰老NSCs的途径提供理论及实验依据。1材料和方法1.1从新生SD大鼠海马组织内分离提取细胞进行原代培养,并通过以下检测鉴定培养细胞是NSCs:1)NSCs标志物——Nestin免疫细胞化学染色;2)根据NSCs多向分化特性,诱导培养的NSCs分化并进行神经元特异性核蛋白NeuN、星形胶质细胞标志物GFAP、少突胶质细胞标志物Gal-C免疫细胞化学检测;3)根据NSCs自我更新特性,进行BrdU掺入实验和BrdU免疫细胞化学染色。1.2采用不同浓度的D-gal(4、8、10、12、16 mg/mL)分别作用第3代NSCs 24、48、72 h或t-BHP(50、100、150μmol/L)分别作用第3代NSCs 1 h、2 h、3 h进行如下检测:1)MTT检测各组NSCs的增殖能力;2)每毫升培养体系接种3000个NSCs,计数NSCs增殖形成的NSCs克隆球数量;3)体外诱导分化培养检测NSCs多向分化能力,采用体视学方法对分化形成的神经元样细胞进行计数估计其数密度(单位面积内的细胞数量);4)衰老特异性β-半乳糖苷酶染色显示衰老神经球,采用体视学方法计数阳性及阴性神经球的数量,以阳性神经球的数量除以两者之和即为SA-β-Gal阳性神经球百分比。通过以上检测选择诱导NSCs衰老的最佳体外模型。1.3将第3代NSCs分为对照组、衰老组(100μmol/L t-BHP作用2 h)、Rg1组(10μg/ml Rg1作用2 h),Rg1抗衰老组(100μmol/L t-BHP和10μg/ml Rg1共同作用2 h)和Rg1治疗衰老组(按衰老组处理后,再用10μg/ml Rg1作用2 h),通过以下检测探讨人参皂苷Rg1延缓NSCs衰老的体外作用及机制:1)同方法2 1)- 3)检测指标;2)体外诱导分化培养检测NSCs多向分化能力,采用体视学方法对分化形成的神经元样细胞、星形胶质细胞样细胞和少突胶质细胞样细胞分别进行计数并分别估计这三种细胞的数密度; 3)检测各组NSCs衰老相关基因p16INK4a、p21Cip1/Waf1mRNA的表达水平。1.4将30只3月龄雄性SD大鼠随机分组。脑衰老组:大鼠颈背部皮下连续注射D-半乳糖42 d(120 mg.kg-1/d);Rg1抗脑衰老组:同衰老模型组处理,并从模型复制的第15 d起腹腔注射Rg1(20 mg.kg-1 /d) ,连续注射28 d;对照组:正常大鼠颈背部皮下连续注射等时和等量生理盐水。各组大鼠在处死前1 d每4 h腹腔注射BrdU 50 mg.kg-1/次,共注射3次。并进行以下几方面检测:1)Morris水迷宫评估各组大鼠的空间学习记忆能力;2)比色法测定脑皮质内的SOD活性及MDA含量;3)实时荧光定量RT-PCR检测海马组织内p16INK4a、p21Cip1/Waf1 mRNA的表达水平;4)Western blotting检测衰老相关基因P16INK4a、P21Cip1/Waf1蛋白的表达水平;5)各组动物制作海马及SVZ区的脑组织石蜡切片,分别用NeuN、BrdU免疫组织化学显色显示神经元细胞核和脑组织内的增殖细胞,镜下观察各组动物海马及SVZ区形态学特征,采用体视学新技术——光学体视框估计SVZ区BrdU阳性细胞的数密度(单位体积SVZ区内的细胞数量)。2结果2.1体外培养的NSCs呈Nestin免疫细胞化学染色阳性反应;诱导分化形成的细胞呈NeuN(显示神经元)、GFAP(显示星形胶质细胞)和Gal-C(显示少突胶质细胞)免疫细胞化学染色阳性反应;BrdU掺入实验呈BrdU免疫细胞化学染色阳性反应。2.2不同浓度的D-gal或t-BHP作用于体外培养的NSCs,均可引起NSCs的增殖能力、NSCs克隆球形成率和分化形成的神经元数密度显著下降,β-半乳糖苷酶染色阳性神经球比率显著升高。2.3与衰老组(t-BHP 100μmol/L作用NSCs 2 h)比较,抗衰老组(10μg/ml Rg1作用NSCs 2 h)及治疗衰老组(100μmol/L t-BHP作用2 h ,再用10μg/ml Rg1作用NSCs 2 h)的NSCs MTT吸光度值分别升高了35%和78%;NSCs克隆球形成数分别显著增加了29%和35%;衰老特异性SA-β-Gal染色阳性神经球百分比显著降低了40%和58%;衰老相关基因p16INK4a、p21Cip1/Waf1mRNA表达水平显著下降。与衰老组比较,Rg1抗衰老组的神经元样细胞、星形胶质细胞样细胞和少突胶质细胞样细胞的数密度显著增加,分别是衰老组的2.2倍、1.9倍和1.7倍; Rg1治疗衰老组的三种细胞的数密度显著增加,分别是衰老组的2.7倍、6.3倍和2.7倍。2.4与D-半乳糖脑衰老组相比,Rg1抗脑衰老组大鼠学习记忆能力显著提高;脑组织内SOD活性显著升高,MDA含量显著降低;p16INK4a、p21Cip1/Waf1 mRNA及蛋白的表达水平显著降低;NeuN免疫组织化学切片显示齿状回区神经元大小较一致,排列较紧密,细胞核着色较均匀、轮廓较清楚;SVZ区BrdU圆形和椭圆形阳性细胞的数量显著增加到脑衰老组的10.4倍和10.8倍。3结论3.1本研究体外培养的细胞经鉴定为NSCs。3.2 D-半乳糖或t-BHP均能在体外诱导NSCs衰老,以D-gal 10 mg/ml作用48 h和t-BHP 100μmol/L作用2 h为衰老模型的较好选择。3.3人参皂苷Rg1可以增强已经衰老NSCs的增殖和分化能力,减少NSCs溶酶体的数量,提示其具有抗衰老和治疗衰老的作用,其机制可能与下调衰老相关基因p16INK4a、p21Cip1/Waf1 mRNA的表达有关。3.4 Rg1具有延缓D-半乳糖所致大鼠脑衰老作用,表现为能提高脑衰老大鼠的空间学习记忆能力、促进SVZ区的NSCs增殖。其机制可能与增强脑组织的抗氧化能力,下调脑组织内p16INK4a、p21Cip1/Waf1 mRNA及蛋白的表达水平有关。
论文目录
相关论文文献
- [1].人参皂苷Rg1促进移植大鼠的组织工程血管内皮化[J]. 第三军医大学学报 2020(05)
- [2].人参皂苷Rg1对2型糖尿病大鼠模型血糖调控作用[J]. 中国民族民间医药 2016(20)
- [3].人参皂苷Rg1抗同型半胱氨酸诱导人脐静脉内皮细胞凋亡的作用及相关机制研究[J]. 重庆医学 2011(14)
- [4].人参皂苷Rg1在神经系统疾病中的作用机制进展[J]. 医学研究杂志 2016(10)
- [5].人参皂甙Rg1对大鼠坐骨神经损伤后修复的剂量效应[J]. 包头医学院学报 2016(09)
- [6].人参皂苷Rg1对小鼠免疫性肝损伤保护作用[J]. 中国公共卫生 2015(03)
- [7].人参皂苷Rg1对冠心病大鼠的影响研究[J]. 中国临床药理学杂志 2020(02)
- [8].人参皂苷Rg1对肝脏缺血再灌注损伤大鼠的影响及机制[J]. 山东医药 2020(28)
- [9].人参皂苷Rg1对β淀粉样蛋白诱导的神经细胞凋亡的研究[J]. 浙江中西医结合杂志 2017(08)
- [10].人参皂苷Rg1对衰老模型大鼠骨髓造血功能的影响及其机理[J]. 中国生物工程杂志 2015(08)
- [11].氯吡格雷对人参皂苷Rg1血浆蛋白结合率的影响[J]. 中国中西医结合杂志 2017(04)
- [12].人参皂苷Rg1诱导大鼠海马神经干细胞分化的实验研究[J]. 神经解剖学杂志 2009(03)
- [13].三七皂甙单体Rg1对失血性休克大鼠肠上皮细胞线粒体功能影响的研究[J]. 创伤外科杂志 2010(03)
- [14].参仙灵颗粒的成分鉴别及冬凌草甲素和人参皂苷Rg1的含量测定[J]. 药学服务与研究 2017(01)
- [15].人参皂苷Rg1对白消胺诱导细胞衰老的延缓作用[J]. 中国生物制品学杂志 2012(10)
- [16].人参皂甙Rg1对昆明小鼠早胚体外发育的影响[J]. 中国组织化学与细胞化学杂志 2012(05)
- [17].星点设计-效应面法优化人参皂苷Rg1脂质体的制备工艺[J]. 中医药信息 2011(04)
- [18].人参皂甙Rg1对颅脑损伤模型大鼠神经细胞凋亡的影响[J]. 实用医学杂志 2010(01)
- [19].人参皂苷Rg1脂质体的制备及稳定性研究[J]. 昆明医学院学报 2009(01)
- [20].人参皂苷Rg1对丙二醛抑制小鼠间充质干细胞成骨分化的保护作用[J]. 生命科学研究 2016(02)
- [21].RP-HPLC法测定参茸安神片中人参皂苷Rg1的含量[J]. 中国医院用药评价与分析 2008(07)
- [22].人参皂苷Rg1与神经干细胞共培养的促增殖和保护作用[J]. 中国组织工程研究 2015(10)
- [23].人参皂苷Rg1调控神经干细胞衰老作用及机制探讨[J]. 中国细胞生物学学报 2011(10)
- [24].人参皂苷Rg1免疫佐剂作用的研究[J]. 军事医学科学院院刊 2009(03)
- [25].人参皂苷Rg1对成年大鼠脑缺血海马区神经干细胞的影响[J]. 第四军医大学学报 2008(24)
- [26].人参皂苷Rg1对小鼠腹腔巨噬细胞的影响[J]. 免疫学杂志 2011(10)
- [27].人参皂苷Rg1对帕金森病模型小鼠室管膜下区神经干细胞的作用[J]. 四川生理科学杂志 2009(01)
- [28].人参皂苷Rg1鼻腔喷雾剂的药效学研究[J]. 贵阳中医学院学报 2012(02)
- [29].人参皂苷Rg1、Rb1抗Aβ人血管内皮细胞损害作用的研究[J]. 赣南医学院学报 2019(12)
- [30].人参皂干Rg1对NOX3致斯氏狸殖吸虫肝纤维化的影响[J]. 中国病原生物学杂志 2017(05)