抗人DR5单克隆抗体诱导人食管癌细胞凋亡的机制研究

抗人DR5单克隆抗体诱导人食管癌细胞凋亡的机制研究

论文摘要

食管癌(Esophageal carcinoma, EC)是世界六大恶性肿瘤之一,其主要流行病学特征是显著的地域性分布差异,高低发区发病率相差高达500倍,并且预后极差,中晚期患者5年生存率仅为10%左右。在中国食管癌患者以食管鳞状上皮细胞癌(Esophageal squamous cell carcinoma, ESCC)为最常见。食管癌的治疗方法及效果对食管癌防治致关重要,近年来,随着食管癌的发病机理和治疗研究的进展,人们认识到细胞凋亡机制的异常在食管癌发生和抗肿瘤治疗中起重要作用,研究发现很多抗肿瘤治疗方法是通过诱导肿瘤细胞凋亡发挥作用。因此,寻找能够诱导食管癌细胞凋亡的活性物质,通过激发食管癌细胞的凋亡途径,达到治疗食管癌的目的是食管癌防治的有效方法之一。肿瘤坏死因子相关的凋亡诱导配体(TNF-related apoptosis inducing ligand, TRAIL)是1995年Wiley等发现的TNF超家族成员,能够诱导多种肿瘤细胞凋亡而对大多数正常细胞无影响。TRAIL通过与肿瘤细胞膜上的相应受体结合诱导细胞凋亡,目前发现TRAIL有5种类型的受体,其中TRAIL受体1(死亡受体4 death receptor 4, DR4)和TRAIL受体2(死亡受体5 death receptor 5, DR5)胞内段含有死亡结构域,能够传递凋亡信号,其他三种受体:TRAIL受体3(DcR1)、TRAIL受体4(DcR2)和OPG(Osteoprotegerin)可阻断TRAIL诱导的凋亡,称为“诱骗”受体。与TNF和FasL不同,TRAIL能够诱导多种肿瘤细胞和病毒感染细胞凋亡,但对正常细胞无影响,TRAIL这一特性使TRAIL有望成为特异的抗肿瘤新药。然而随着研究的深入,发现有些重组TRAIL(rhTRAIL)对正常肝细胞等也有一定的凋亡作用,这使人们对TRAIL临床应用的安全性产生了疑虑,加之TRAIL受体的多样性影响了TRAIL诱导细胞凋亡作用的发挥,也一定程度上限制了TRAIL的临床应用。实验发现一些抗TRAIL受体1和受体2(DR4、DR5)的抗体,也有诱导细胞凋亡的作用,由于在生理条件下TRAIL与DR5的亲和力明显大于DR4,因此,在TRAIL诱导细胞凋亡过程中DR5是起主要作用的受体。以TRAIL诱导凋亡的主要受体DR5为靶点,研制能激发肿瘤凋亡的抗DR5的单克隆抗体成为TRAIL临床研究的新方向,能诱导肿瘤细胞凋亡的抗DR5单抗有可能替代TRAIL有效地用于肿瘤临床治疗。目的:制备出能够诱导肿瘤细胞凋亡抗人DR5的单克隆抗体,探讨该抗体对食管癌细胞系及食管上皮细胞系的诱导凋亡的分子机制,并就此抗体进行了初步的抗肿瘤作用的动物实验,为下一步的功能抗体的人源化改造及临床实验研究奠定基础,以早日实现此功能抗体的临床应用。方法:提取纯化可溶性人DR5(soluble DR5,sDR5)胞外段,用sDR5免疫BALB/c小鼠,将小鼠脾细胞与NS-1细胞在50%PEG条件下,通过细胞融合技术,获得了诱导肿瘤细胞凋亡的抗人DR5的单克隆抗体-命名为mDRA-6,mAb采用Protein G亲和层析柱纯化,免疫印迹检测其特异性。食管鳞癌细胞表面DR5表达水平采用流式细胞仪检测;单克隆抗体对食管癌细胞的杀伤活性用MTT法检测、对食管鳞癌细胞系的凋亡作用采用Hoechst 33258染色荧光显微镜下观察细胞形态变化,采用JC-1单染及Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术定量分析技术对食管鳞癌细胞系的凋亡进行定量分析。利用免疫印迹技术(Western blotting)检测凋亡细胞的Caspase8、Caspase3、Caspase9及Bid、bax、bcl-2、cytochrome c表达情况。建立食管癌磷癌EC109荷瘤Scid小鼠模型,腹腔注射mDRA-6观察肿瘤的生长及消退情况。结果:1.用不表达DR5的NS-1骨髓瘤细胞融合的方法,制备诱导肿瘤细胞凋亡的抗人DR5的单克隆抗体(命名为mDRA-6),该抗体能与DR5特异性结合。2. DR5在食管鳞癌及转化食管细胞系表面的表达:在所检测的4种食管鳞癌及转化食管细胞系表面均有DR5的表达,人食管鳞癌低分化细胞系EC9706、高分化细胞系EC109细胞系DR5的表达为91.31%、96.56%,食管永生化细胞NE6的DR5的表达表达45.81%,食管上皮细胞系NEC的DR5的表达5.64%。食管鳞癌细胞系DR5表达水平最高,食管永生化细胞次之,食管上皮细胞最低。3. mDRA-6单抗对食管鳞癌细胞的细胞毒作用:MTT法检测显示,mDRA-6在20μg/ ml浓度作用24小时,对食管鳞癌EC9706、EC109细胞系的抑制率分别为56.53%、68.82%,对食管永生化细胞NE6的抑制率为26.82%,而对食管上皮细胞系NEC细胞几乎无有作用,仅为4.56%。有此可知mDRA-6对细胞的生长抑制与细胞表面的DR5表达呈正相关性。4. mDRA-6单抗对食管鳞癌细胞的凋亡作用:在荧光显微镜下mDRA-6导致细胞呈现典型细胞凋亡的形态特征; Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术检测显示, mDRA-6在20μg/ ml浓度作用EC9706细胞6、12、24小时,凋亡率分别为20.58%、39.90%、50.09%,作用于EC109细胞6、12、24小时凋亡率分别为27.47%、33.28%、57.46%。线粒体膜电位试剂盒(JC-1)检测显示EC9706细胞6、12、24小时,凋亡率分别为15.71%、24.40%、44.93%,EC109细胞凋亡率分别为36.60%、40.48%、52.31%。5.免疫印迹技术(Western blotting)检测凋亡细胞的Caspase8、Caspase3、Caspase9及Bid、bax、bcl-2、cytochrome c表达情况:显示mDRA-6诱导人食管鳞癌细胞凋亡的分子机制是通过死亡受体DR5,激活和启动外源性细胞凋亡途径,进而又激活内源性细胞凋亡途径,最终引起肿瘤细胞的凋亡。6.注射mDRA-6的荷瘤Scid小鼠的肿块与对照组相比较小,证明mDRA-6具有明显的抗肿瘤作用。结论:1.获得了诱导肿瘤细胞凋亡的抗人DR5的功能性单克隆抗体mDRA-6。2.在所检测的4种食管鳞癌细胞及食管上皮细胞系、食管永生化细胞表面均有DR5的表达,但不同细胞表面DR5的表达水平存在着很大的差异。3.mDRA-6能够诱导人食管鳞癌细胞系EC9706、EC109的凋亡,主要通过激活死亡受体细胞凋亡信号传导途径发挥作用。4.mDRA-6对荷瘤Scid小鼠具有很好的抗肿瘤作用,为今后此功能抗体的人源化改造及临床实验研究奠定了基础。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 正文部分
  • 前言
  • 第一部分 重组人可溶性 DR5 蛋白的制备及抗 DR5 单克隆抗体的研制
  • 1.1 序言
  • 1.2 材料、试剂与仪器
  • 1.2.1 实验动物
  • 1.2.2 菌株和NS-1 细胞株
  • 1.2.3 主要生化试剂
  • 1.2.4 主要仪器
  • 1.3 方法与步骤
  • 1.3.1 可溶性死亡受体5(sDR5)的制备
  • 1.3.2 免疫印记检测sDR5 的特异性
  • 1.3.3 sDR5 免疫 BALb/c 小鼠
  • 1.3.4 细胞融合
  • 1.3.5 杂交瘤的筛选及单克隆抗体 Ig 亚类鉴定
  • 1.3.6 腹水mDRA-6 的制备及纯化
  • 1.3.7 免疫印迹检测mDRA-6 的特异性
  • 1.3.8 mAb 的细胞凋亡活性分析
  • 1.4 实验结果
  • 1.4.1 纯化的重组人sDR5 蛋白纯度及表观分子量
  • 1.4.2 纯化的重组人sDR5 蛋白的免疫印迹结果
  • 1.4.3 杂交瘤细胞株的建立及抗体纯化
  • 1.4.4 mDRA-6 的特异性及凋亡活性分析
  • 1.5 讨论
  • 1.6 参考文献
  • 第二部分 功能抗体mDRA-6 对人食管癌细胞诱导凋亡的机制研究
  • 2.1 序言
  • 2.2 材料、仪器与试剂
  • 2.2.1 细胞系
  • 2.2.2 主要试剂及配制
  • 2.2.3 主要仪器
  • 2.3 实验方法及步骤
  • 2.3.1 细胞表面 DR5 的表达检测
  • 2.3.2 mDRA-6 诱导细胞凋亡的毒性测定(MTT 法)
  • 2.3.3 细胞凋亡形态学观察
  • 2.3.4 DNA ladder 检测细胞凋亡
  • 2.3.5 Annexin Ⅴ/PI 双染法检测细胞凋亡情况
  • 2.3.6 细胞凋亡线粒体膜电位的检测
  • 2.3.7 免疫印迹技术(Western blotting)检测细胞凋亡的蛋白信号途径
  • 2.4 实验结果
  • 2.4.1 细胞表面 DR5 的表达结果
  • 2.4.2 mDRA-6 对4 种细胞凋亡的毒性测定结果(MTT 法)
  • 2.4.3 mDRA-6 诱导细胞凋亡的形态变化
  • 2.4.4 DNA ladder 检测细胞凋亡
  • 2.4.5 流式细胞术检测细胞凋亡结果
  • 2.4.6 线粒体膜电位的检测结果
  • 2.4.7 Western blotting 检测细胞凋亡信号结果
  • 2.5 讨论
  • 2.6 参考文献
  • 第三部分 功能抗体mDRA-6抗肿瘤作用的动物学实验
  • 3.1 序言
  • 3.2 材料、仪器与方法
  • 3.2.1 实验动物及细胞株
  • 3.2.2 主要仪器
  • 3.2.3 主要试剂及配方
  • 3.2.4 光镜标本的制备
  • 3.2.5 H-E 染色原理和方法
  • 3.2.6 荷瘤小鼠模型的建立
  • 3.2.7 肿瘤组织形态学的观察
  • 3.3 结果
  • 3.3.1 肿瘤的scid 小鼠动物模型
  • 3.3.2 mDRA-6 对肿瘤的疗效观察
  • 3.3.3 对小鼠肿瘤解剖结果的测量与观察
  • 3.3.4 对不同治疗组肿瘤组织的常规 HE 染色
  • 3.3.5 对不同治疗组肿瘤组织用Hoechst 33258染色
  • 3.3.6 mDRA-6 对scid 小鼠移植肿瘤的治疗效果与时间的关系
  • 3.4 讨论
  • 第四部分 结论
  • 第五部分 文献综述 TRAIL 受体与肿瘤治疗的研究进展
  • 5.1 概述
  • 5.2 TRAIL 及其受体
  • 5.2.1 TRAIL/Apo2L 结构及基因
  • 5.2.2 TRAIL/Apo2L 的受体
  • 5.3 TRAIL/Apo2L 介导的细胞凋亡
  • 5.4 对TRAIL敏感与耐受的分子机制
  • 5.5 抗 DR4、抗 DR5 的功能性凋亡抗体临床应用
  • 5.6 结论及展望
  • 5.7 参考文献
  • 主要缩略语
  • 研究生期间发表的论文
  • 致谢
  • 相关论文文献

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