建立一种快速检测NF-κB活性的酶标方法

建立一种快速检测NF-κB活性的酶标方法

论文摘要

NF-κB是一种十分重要的转录因子,参与多种基因的表达调控,具有影响细胞的生长、分化、凋亡、癌变和个体发育等多种生物学功能。它的异常激活与肿瘤的发生,抗药性和肿瘤的转移相关,而抑制细胞内NF-κB的异常激活就可抑制肿瘤的发生、转移,降低肿瘤细胞对化疗或放疗的耐受性。因此,NF-κB是一种新型抗肿瘤药物筛选的靶分子。 本实验从人神经胶质瘤U251细胞中提取总RNA,通过RT-PCR方法得到人NF-κB P50全长基因(长1308bp,编码436个氨基酸);构建了重组表达载体pGEX-4T-P50;转入大肠杆菌后,在30℃,IPTG终浓度为0.2mM,诱导6hr,获得融合蛋白GST-P50(分子量约70kD),表达量占菌体总蛋白的30%,可溶性融合蛋白为总融合蛋白的1/5;纯化融合蛋白并免疫家兔获得了多克隆抗体,抗体经纯化并分装保存;Western印迹分析表明纯化后的多克隆抗体中已经无针对GST蛋白的抗体,而只具有较强的专一于P50蛋白的抗体;ELISA分析证实其效价为5×105。 本实验构建的酶标检测方法,经过摸索并确定了:GST-P50包被浓度为1μg/ml、包被体积为100μl,抗体的稀释度为1/1600,抗体与核蛋白样品的温育条件为37℃ 1hr,此时检测NF-κB活性的灵敏度最高,可达到ng级,足以检测出细胞中NF-κB活性的微量变化。 进一步利用检测模型来验证此酶标方法的优劣,实验组加入了100ng/mlLPS刺激U251细胞30min,细胞中NF-κB的活性就显著增高,1hr达到峰值,然后开始下降,6hr已经处于低水平的维持状态;当刺激时间同样维持在1hr,LPS的浓度分别为10ng/ml、20ng/ml、40ng/ml、60ng/ml、100ng/ml时,细胞中NF-κB的活性随剂量的增加而增高,用我们的酶标方法得到的检测结果(细胞内NF-κB活性变化趋势)与Wang X的报道一致,从而验证了本实验所建立的酶标方法具有特异性和实效性。该酶标方法的建立为判定NF-κB的活化程度、研究相关信号转导及筛选高效的NF-κB拮抗药物奠定了基础。

论文目录

  • 致谢
  • 目录
  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一部分
  • 第一章 文献综述
  • 1.1 NF-κB蛋白家族组成
  • 1.2 NF-κB的激活途径
  • 1.3 NF-κB调控的基因
  • 1.4 NF-κB的生物学功能
  • 1.4.1 NF-κB与细胞凋亡
  • 1.4.2 NF-κB与细胞周期
  • 1.4.3 NF-κB与免疫
  • 1.4.4 NF-κB与肿瘤
  • 1.5 NF-κB是一种新型抗肿瘤药物筛选的靶分子
  • 1.6 现有检测NF-κB活性的方法
  • 第二章 实验设计方案
  • 2.1 本实验的选题依据及目标
  • 2.2 本实验的主要内容
  • 2.3 本实验所要解决的关键性问题
  • 2.4 技术路线
  • 第二部分
  • 第三章 重组表达载体PGEX-4T-P50的构建
  • 3.1 材料
  • 3.1.1 实验材料
  • 3.1.2 培养基和缓冲液
  • 3.2 实验方法
  • 3.2.1 总RNA提取
  • 3.2.2 RT-PCR反应
  • 3.2.3 PCR扩增目的片段
  • 3.2.4 低熔点胶回收PCR产物
  • 3.2.5 重组载体pGEX-4T-P50的制备
  • 3.2.6 连接反应
  • 3.2.7 E.coli TG1感受态细胞的制备(以下操作均在超净台上进行)
  • 3.2.8 连接产物转化感受态细胞
  • 3.2.9 碱法小批量抽提质粒DNA
  • 3.2.10 重组质粒pGEX-4T-P50的双酶切鉴定
  • 3.2.11 重组质粒pGEX-4T-P50的PCR鉴定
  • 3.2.12 基因序列测定
  • 3.2.13 核酸电泳
  • 3.3 结果与分析
  • 3.3.1 总RNA的提取
  • 3.3.2 质粒pGEX-4T-1的图谱
  • 3.3.3 重组载体构建策略
  • 3.3.4 重组载体的鉴定
  • 3.4 讨论
  • 第四章 融合蛋白的诱导表达、纯化及抗体制备
  • 4.1 材料
  • 4.1.1 实验材料
  • 4.1.2 试剂和缓冲液
  • 4.2 实验方法
  • 4.2.1 融合蛋白的诱导表达
  • 4.2.2 融合蛋白的纯化
  • 4.2.3 抗体的制备
  • 4.2.4 抗体的纯化
  • 4.2.5 抗体的Western印迹分析(参照分子克隆实验指南)
  • 4.2.6 抗体的ELISA检测
  • 4.3 结果与分析
  • 4.3.1 SDS-PAGE分析融合蛋白的表达及纯化
  • 4.3.2 抗体的Western印迹分析
  • 4.3.3 抗体的ELISA检测分析
  • 4.4 讨论
  • 第五章 酶标检测方法的构建及验证
  • 5.1 材料
  • 5.1.1 实验材料
  • 5.1.2 培养基、试剂和缓冲液
  • 5.2 实验方法
  • 5.2.1 U251细胞培养
  • 5.2.2 U251细胞冻存
  • 5.2.3 细胞处理及分组
  • 5.2.4 核蛋白的提取
  • 5.2.5 检测模型验证
  • 5.2.6 统计学处理
  • 5.3 结果与分析
  • 5.3.1 酶标方法原理图
  • 5.3.2 酶标方法的建立
  • 5.3.3 检测模型对其验证
  • 5.4 讨论
  • 结论
  • 展望
  • 附录
  • 参考文献
  • 相关论文文献

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