论文摘要
猪繁殖与呼吸综合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS)和猪2型圆环病毒(Porcine circovirus type 2, PCV2)病是当今养猪业严重关切的两种重大传染病之一,两病的广泛流行和蔓延已给世界各国养猪业的发展造成了严重威胁和经济损失。在现代化规模养猪场中,PCV2与PRRSV往往混合感染,发病率呈上升趋势。为了有效控制这两种传染病的流行,减少由此引起的经济损失,本研究以PCV2和PRRSV当地流行毒株为研究材料,进行了基因克隆、分子结构特征分析、基因图谱绘制、分子诊断、流行病学调查及免疫研究,主要研究成果如下:(1)应用RT-PCR技术,分段克隆了PRRSV GS株基因,采用DNAStar软件将各基因依次拼接,并对其特征进行了分析,绘制了PRRSV GS株全基因图谱和系统进化树。结果表明,该毒株全基因组长15427bp,包含8个阅读框(ORF),其中5’端非编码区长190bp,与国内外参考毒株核苷酸序列的同源性分别为56.3%~97.9%;ORF1长11882,其中ORF1a长7512bp,与国内外参考毒株核苷酸及推导氨基酸序列同源性分别为54.3%~98.7%和49%~99.3%,ORF1b长4374bp,与国内外参考毒株核苷酸及推导氨基酸序列同源性分别为60.8%~95.5%和49%~99.3%;结构蛋白基因长约3819bp,分为6个结构蛋白基因区,与BJ-4、CH-1a、HB-2(sh)/2002和VR-2332美洲株等核苷酸的同源性分别为:ORF2 93.1%~96.6%,ORF3 90.7%~96.5%,ORF4 88.1%~95.5%,ORF5 87.9%~95.0%,ORF6 95.1%~97.1%,ORF7 92.2%~95.7%,推导的氨基酸同源性分别为:ORF2 91.1%~95.7%,ORF3 89.4%~92.5%,ORF4 88.3%~96.6%,ORF5 87.1%~95.0%,ORF6 96%~97.1%,ORF7 90.3%~95.2%;3’端非编码区长151bp,与国内外参考毒株核苷酸序列的同源性分别为70.9%~100%;最后有一个长14个碱基的poly(A)尾。从系统进化树分析,PRRSV GS株同以LV株为代表的欧洲型遗传距离较远,而与以VR-2332株为代表的北美洲型和流行于我国的毒株遗传距离较近,进一步证实了流行于我国的毒株在基因型上属于北美洲型。(2)构建了PRRSV GS株E基因的重组腺病毒质粒,转染AD-293细胞,经荧光检测表明获得了AD-E复制缺陷型腺病毒。用重组腺病毒AD-E免疫小鼠,以间接ELISA和MTT法检测小鼠血清抗体水平和T淋巴细胞增殖情况,结果能刺激T淋巴细胞增殖,但未能检测到小鼠血清中的抗体,其原因有待进一步研究。(3)应用PCR技术对从甘肃猪场分离的3株PCV2毒株进行了全序列测定,其中PCV2 Ww株基因组长度为1768bp,PCV2 LZ和TS株长1767bp,将序列登陆到Genbank获得3个登录
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摘要Summary英文缩略表第一章 绪言1.1 研究背景及目的、意义1.1.1 猪繁殖与呼吸综合征病毒和猪繁殖与呼吸综合征疫苗1.1.2 猪圆环病毒和猪圆环病毒疫苗1.2 国内外研究进展1.2.1 核酸疫苗1.2.2 活载体疫苗1.2.3 猪繁殖与呼吸综合征的疫苗研究进展1.2.4 猪2 型圆环病毒的疫苗研究进展1.3 研究内容与方法第二章 猪繁殖与呼吸综合征病毒基因克隆、结构特征分析及基因图谱绘制一、猪繁殖与呼吸综合征病毒5’端非编码区的分子克隆及序列分析1 材料与方法1.1 病毒1.2 主要试剂1.3 菌种与载体1.4 病毒 RNA 的提取1.5 引物1.6 RT-PCR1.7 PCR 产物的纯化、回收1.8 PCR 纯化产物与pMD18-T 载体连接1.9 感受态细菌的制备1.10 转化感受态细胞1.11 质粒 DNA 的提取1.12 重组质粒的鉴定1.13 5’NCR 的序列分析2 结果与分析2.1 PCR 扩增反应2.2 核苷酸同源性分析2.3 5’NCR 二级结构分析3 讨论二、猪繁殖与呼吸综合征病毒非结构蛋白基因的克隆及其基因特征的分析1 材料和方法1.1 病毒1.2 质粒和菌种1.3 试剂和工具酶1.4 引物1.5 病毒RNA的提取1.6 RT-PCR 反应1.7 目的基因的克隆和鉴定1.8 序列分析2 结果2.1 目的基因的克隆2.2 非结构蛋白基因的序列测定结果3 讨论三、猪繁殖与呼吸综合征病毒结构蛋白基因的克隆及其基因特征的分析1 材料和方法1.1 病毒1.2 质粒和菌种1.3 试剂和工具酶1.4 引物1.5 病毒RNA的提取1.6 RT-PCR 反应1.7 目的基因的克隆和鉴定1.8 序列分析2 结果与分析2.1 目的基因的克隆2.2 结构蛋白基因的序列测定结果2.3 结构蛋白基因的同源性分析2.4 遗传进化树3 讨论四、猪繁殖与呼吸综合征病毒3’端非编码区的分子克隆及序列分析1 材料与方法1.1 病毒1.2 病毒 RNA 的提取1.3 主要试剂1.4 菌种与载体1.5 引物1.6 3’NCR 的分子克隆1.7 目的基因的克隆与鉴定1.8 3’NCR 的序列分析2 结果与分析2.1 PCR 扩增结果及阳性重组质粒酶切鉴定2.2 核苷酸同源性分析2.3 3’NCR 二级结构分析3 讨论小结第三章 猪繁殖与呼吸综合征病毒 E 基因腺病毒载体的构建及分子免疫研究1 材料和方法1.1 毒株与细胞1.2 载体及菌株1.3 工具酶及其它试剂盒1.4 细胞培养1.5 病毒 RNA 的提取1.6 E 基因的制备1.7 含感受态细胞的准备1.8 重组腺病毒穿梭载体的构建1.9 重组腺病毒质粒的构建1.10 转染AD-293细胞获得重组腺病毒1.11 RT-PCR 检测重组病毒的产生1.12 动物1.13 小鼠脾脏 T 淋巴细胞制备及T 细胞增殖实验1.14 免疫小鼠血清抗体检测2 结果与分析2.1 E 基因的扩增和重组质粒的酶切鉴定2.2 重组腺病毒穿梭载体的构建2.3 获得复制缺陷型腺病毒质粒2.4 重组腺病毒的收获及鉴定2.5 T 淋巴细胞增殖反应的测定结果2.6 实验小鼠血清中 PCV2 特异性抗体测定3 讨论第四章 三株猪2 型圆环病毒流行毒株基因克隆、结构特征分析及基因图谱绘制1 材料与方法1.1 病毒样品1.2 载体与菌株1.3 工具酶及其它试剂盒1.4 引物设计与合成1.5 仪器与设备1.6 病毒DNA的提取1.7 病毒DNA 的PCR 扩增1.8 PCR 产物的纯化、回收1.9 PCR 纯化产物与pMD18-T 载体连接1.10 感受态细菌的制备1.11 转化感受态细胞1.12 质粒 DNA 的提取1.13 重组质粒的鉴定1.14 序列分析2 结果与分析2.1 各猪场组织病料中 PCV2 的 PCR 检测结果2.2 PCV2 分离株的全基因序列测定与分析2.3 3 株猪圆环病毒2 型核苷酸序列与已发表序列核苷酸同源性比较2.4 三株猪圆环病毒2 型ORF1 核苷酸及推导氨基酸序列同源性比较2.5 三株猪圆环病毒2 型ORF2 核苷酸及推导氨基酸序列同源性比较2.6 三株ORF2 基因编码的氨基酸抗原性和亲水性分析3 讨论第五章 猪2 型圆环病毒核酸载体构建及分子免疫研究1 材料和方法1.1 质粒及菌株1.2 工具酶及其它试剂盒1.3 引物1.4 目的基因的获得1.5 真核表达质粒获得1.6 免疫用质粒的制备1.7 实验动物1.8 实验分组1.9 实验小鼠T 淋巴细胞增殖反应的测定1.10 免疫小鼠血清抗体水平检测2 结果与分析2.1 PCR 扩增结果及阳性重组质粒酶切鉴定2.2 T 淋巴细胞增殖反应的测定结果2.3 实验小鼠血清中 PCV2 特异性抗体测定3 讨论第六章 猪2 型圆环病毒Cap 基因的腺病毒载体构建及分子免疫研究1 材料和方法1.1 质粒及菌株1.2 工具酶及其它试剂盒1.3 引物1.4 目的基因的获得1.5 重组腺病毒穿梭载体的获得1.6 大肠杆菌 JM109 感受态细菌的制备1.7 转化感受态细胞1.8 质粒 DNA 的提取1.9 重组腺病毒载体的鉴定1.10 同源重组获得腺病毒载体1.11 转染 AD-293 细胞获得重组腺病毒1.12 PCR 检测重组病毒的产生1.13 动物1.14 实验分组1.15 T 淋巴细胞悬液的制备及 T 淋巴细胞增殖反应的测定1.16 免疫小鼠血清抗体水平检测2 结果与分析2.1 衣壳蛋白 Cap 基因的扩增2.2 重组腺病毒穿梭载体的构建2.3 获得复制缺陷型腺病毒质粒2.4 荧光显微镜检测报告基因 EGFP 的表达2.5 重组腺病毒质粒转染293 细胞2.6 T 淋巴细胞增殖反应的测定结果2.7 实验小鼠血清中 PCV2 特异性抗体测定3 讨论第七章 结论第八章 文献综述文献综述一:猪圆环病毒研究进展1 病原学2 PCV2 流行病学3 PCV2 感染的病理变化4 PCV2 的致病机理5 PCV2 的诊断技术6 PCV2 的防治7 展望文献综述二:猪繁殖与呼吸综合征研究进展1 病原学2 PRRSV 分子生物学研究3 PRRS 病毒的遗传变异4 流行病学5 临床症状6 病理变化和发病机制7 疫苗免疫及防制策略8 结语参考文献致谢作者简介导师简历
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