氯化镉诱导HL-7702细胞凋亡及其机制的研究

氯化镉诱导HL-7702细胞凋亡及其机制的研究

论文摘要

镉(Cadmium)是一种有毒的重金属元素,易在体内蓄积,镉对机体毒性效应十分复杂。肝脏是镉损伤的主要靶器官之一,目前对镉致肝细胞损伤机制尚不十分清楚。本文对氯化镉诱导肝细胞凋亡作用及其机制进行了探讨。以正常人肝细胞系HL-7702细胞为模型,采用生长曲线法和MTT法检测氯化镉对细胞生长的抑制作用;采用流式细胞术(FCM)检测氯化镉对细胞周期的影响;采用AO/EB双染法和FCM技术检测氯化镉对细胞凋亡的影响;生物化学方法检测氯化镉对细胞的氧化损伤作用;RT-PCR方法检测凋亡相关基因转录水平的变化;采用免疫细胞化学法和Western Blot方法检测凋亡相关蛋白的表达情况。结果表明:氯化镉可以抑制HL-7702细胞生长,诱导细胞发生S期阻滞,诱导细胞发生凋亡,引起细胞发生氧化损伤,还可以引起凋亡相关基因转录水平和蛋白表达水平发生改变。氯化镉诱导HL-7702细胞凋亡的机制与氯化镉可诱导细胞发生S期阻滞,诱发氧化损伤以及调控凋亡相关基因和蛋白表达有关。本研究对于深入探讨镉肝毒性作用机制,特别是对正常人肝细胞毒性作用的机制具有重要的理论意义;对镉作为抗肝癌药物的相关机制研究有重要的参考价值;同时也为镉肝毒性有效防治打下实验基础。

论文目录

  • 英文缩写
  • 第一章 绪论
  • 1. 环境镉污染及其危害
  • 1.1 镉污染的现状
  • 1.2 镉对人体健康的危害
  • 2. 细胞凋亡及信号转导通路
  • 2.1 细胞凋亡的概念
  • 2.2 细胞凋亡的特征
  • 2.3 细胞凋亡的检测方法
  • 2.4 细胞凋亡基因调控
  • 2.5 凋亡的信号转导通路
  • 第二章 材料和方法
  • 1. 实验主要试剂及器材
  • 1.1 试剂
  • 1.2 器材
  • 2. 主要仪器
  • 3. 细胞系
  • 4. 细胞生物学方法
  • 4.1 细胞培养
  • 4.2 细胞生长曲线测定
  • 4.3 细胞毒性作用检测
  • 4.4 细胞周期检测
  • 4.5 FCM 检测细胞凋亡
  • 4.6 AO/EB 双染检测细胞凋亡
  • 5. 生物化学方法
  • 5.1 细胞培养
  • 5.2 蛋白定量
  • 5.3 SOD 活性测定
  • 5.4 MDA 含量测定
  • 5.5 GSH-Px 活性测定
  • 6. 分子生物学实验方法
  • 6.1 引物设计及合成
  • 6.2 细胞总 RNA 的提取和定量
  • 6.3 RT-PCR 法
  • 6.4 琼脂糖凝胶电泳和灰度分析
  • 7. FCM 检测Caspase-3 蛋白的表达
  • 7.1 细胞培养
  • 7.2 抗体标记
  • 7.3 流式细胞术检测蛋白质表达
  • 8. 免疫细胞化学方法检测Fas 和FasL 蛋白的表达
  • 8.1 试剂配制
  • 8.2 实验步骤
  • 9. Western Blot 方法检测 Caspase-3 蛋白的表达
  • 9.1 蛋白提取和定量
  • 9.2 试剂配制
  • 9.3 凝胶制备
  • 9.4 样品的制备、加样及电泳
  • 9.5 蛋白质的电转移
  • 9.6 封闭
  • 9.7 抗体的结合及显示目标蛋白带
  • 10. 统计学方法
  • 第三章 实验结果
  • 1. 氯化镉对 HL-7702 细胞的抑制作用
  • 2. 不同浓度氯化镉对 HL-7702 细胞周期的影响
  • 3. 氯化镉对 HL-7702 细胞凋亡的影响
  • 4. 氯化镉对 HL-7702 细胞的氧化损伤作用
  • 5. 细胞凋亡相关基因转录水平的变化
  • 6. 细胞凋亡相关蛋白表达的变化
  • 第四章 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 附录
  • 攻博期间发表的学术论文及其他成果
  • 中文摘要
  • Abstract
  • 致谢
  • 相关论文文献

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