论文摘要
目的:1、探讨人脐血间充质干细胞(MSCs)体外分离培养的最佳方法。2、探讨人脐血MSCs向神经细胞定向诱导分化的最佳方案。方法:1、无菌条件下采集足月分娩和早产儿(不足37周)脐血,密度梯度离心法分离脐血单个核细胞(MNCs),比较不同条件对脐血MSCs原代培养过程的影响:(1)培养基:L-DMEM培养基、DMEM/F12培养基和MesencultTM培养基;(2)胎龄:足月妊娠和早产儿;(3)接种密度:5×105/cm2、1×106/cm2、5×106/cm2、1×107/cm2;(4)首次换液时间:2、3、4、5、6、7d。通过免疫荧光方法检测表面标记物CD29、CD34、CD44和CD90的表达情况,观察脐血MSCs的生物学特性。2、第3代脐血MSCs,胰酶消化传代,待长至约80%融合时进行诱导,分三组:(1)化学诱导剂组:3mmol/Lβ-ME+20g/L DMSO+200mmol/L BHA;(2)生长因子诱导组:20ng/ml EGF+20ng/ml bFGF;(3)丹参素+生长因子诱导组:3%香丹注射液(有效成分丹参素)+20ng/ml EGF+20ng/ml bFGF。采用免疫细胞化学方法和(或)免疫荧光方法检测诱导前后神经元特异性标志(NeuN、β-TubulinⅢ)和星形胶质细胞特异性标志GFAP表达的变化。结果:1、足月分娩脐血,采用MesencultTM培养基,以5×106/cm2的密度接种,首次换液时间为7d时,脐血MSCs原代培养成功率较高。相同培养条件下,早产儿脐血MSCs培养成功率高于足月分娩脐血。人脐血MSCs强表达CD29、CD44和CD90,不表达造血干细胞表面标志CD34。2、免疫细胞化学方法检测结果:诱导前三组脐血MSCs的NeuN、β-TubulinⅢ、GFAP表达均为阴性;化学诱导后上述三种标志物的阳性率分别为(71.6±4.6)%、(73.8±2.3)%和(12.6±2.0)%;生长因子诱导后分别为(43.6±3.9)%、(54.6±4.1)%和(31.8±5.0)%;丹参素+生长因子诱导后分别为(78.6±4.5)%、(82.6±4.3)%和(15.6±3.6)%。免疫荧光方法检测发现:诱导前三组脐血MSCsβ-TubulinⅢ表达均为阴性,诱导后三组β-TubulinⅢ的阳性率分别为(72.6±2.7)%、(54.5±1.9)%和(79.8±3.0)%。结论:1、足月妊娠脐血采用MesencultTM培养基,以5×106/cm2的密度接种,首次换液时间为7d,脐血MSCs原代培养成功率较高。相同培养条件下,早产儿脐血MSCs培养成功率高于足月分娩脐血。2、丹参素联合生长因子EGF、bFGF在体外可诱导脐血MSCs分化为神经元样细胞,诱导效果最佳。
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