论文摘要
阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)是一种中枢神经系统的退行性疾病,其原因和发病机制至今未明。β淀粉样蛋白(amyloid proteinβ, Aβ)的神经毒作用是导致AD的共同通路,大量研究表明Aβ诱导的细胞凋亡是AD发病的重要病理生理学机制。细胞膜氯通道的激活可能是介导细胞凋亡的重要离子机制,本实验利用氯通道的阻断剂DIDS和Phloretin研究Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡这一AD模型中氯通道的作用。JNK信号通路是丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases, MAPKs)中重要的通路之一,是参与应激诱导的细胞凋亡的重要信号转导机制,本实验初探Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡过程中是否有JNK蛋白的磷酸化激活,以及氯通道阻断剂DIDS和Phloretin与JNK的磷酸化激活的关系。由于Aβ诱导神经元凋亡的机制十分复杂,至今尚未找到可以抑制细胞凋亡的关键性靶点。因此,阐明机制找到靶点,将为AD的防治带来希望。目的:1.观察氯通道阻断剂DIDS能否抑制Aβ25-35诱导的PC12细胞凋亡,了解氯通道在Aβ诱导PC12细胞凋亡过程中的作用。2.观察对VSOR Cl-通道有相对特异性阻断作用的Phloretin能否抑制Aβ25-35诱导的PC12细胞凋亡,从而了解VSOR Cl-通道是否参与下调Aβ毒性作用。3.探讨JNK在Aβ25-35诱导的PC12细胞凋亡中的作用,以及氯通道阻断剂与JNK的关系。方法:1.以传代培养的PC12细胞为研究对象,实验设立阴性组(正常对照组),阳性对照组(仅给Aβ25-35诱导细胞凋亡处理),及实验组(Aβ25-35诱导细胞凋亡+氯通道阻断剂DIDS或Phloretin)。2.噻唑兰(3-( 4, 5-dimethylthiazol-2-yl) -2, 5-diphenyl tetrazolium bromide,MTT)比色法观察PC12细胞存活率;用荧光显微镜观察Hoechst33258荧光染色后的细胞核的形态学变化;采用荧光素检测乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase, LDH)水平,反映PC12细胞膜完整性的改变;DNA琼脂糖凝胶电泳,检测PC12细胞凋亡的发生。3.采用Western Blot印迹法检测Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡时不同时间点P-JNK的表达和不同处理组P-JNK的表达。4.所有数据应用SPSS11.0统计软件进行数据分析处理。结果:1.实验结果验证了Aβ25-35作用于PC12细胞时细胞发生凋亡。并且发现DIDS和Phloretin能够有效地抑制Aβ25-35诱导的PC12细胞凋亡。2. 40μmol/L Aβ25-35作用于PC12细胞(作用24 h)后,MTT实验显示细胞存活率(58.4 %±9.3 %)降低,与阳性对照组相比细胞存活率在Aβ25-35+DIDS组(86.0%±7.2%)或Aβ25-35+ Phloretin组(94.1%±9.3%),均有增加,且差异有统计学意义(P < 0.01)。3. Hoechst33258荧光染色显示Aβ25-35作用于PC12细胞时,细胞出现明显的皱缩,胞核染色质断裂、聚集、固缩等典型的凋亡形态学变化,而实验组凋亡细胞明显减少。4. LDH释放水平:阴性组与Aβ25-35阳性对照组(433.1±41.5 U/L)比较差异有统计学意义(P < 0.01);Aβ25-35阳性对照组与Aβ25-35+Phloretin实验组(354.4±34.3 U/L)比较差异有统计学意义(P < 0.01);Aβ25-35阳性对照组与Aβ25-35 +DIDS实验组(366.7±28.3 U/L),比较差异有统计学意义(P < 0.01)。5. DNA琼脂糖凝胶电泳结果:Aβ25-35阳性组可以见到明显的DNA“梯带”,阴性组和实验组没有DNA“梯带”。6. Western Blot印迹结果:6 h时Aβ25-35诱导PC12 P-JNK蛋白表达量增高,与0 h比较差异有统计学意义(P < 0.01)。两个实验组与阳性对照组比较,P-JNK蛋白表达量的差异均有统计学意义(P < 0.01)。结论:本研究表明:氯通道阻断剂DIDS和Phloretin可以抑制Aβ25-35诱导的PC12细胞凋亡,而且,应用氯通道阻断剂可使P-JNK表达降低。因相对特异性的VSOR Cl-通道阻断剂Phloretin可以对Aβ诱导的PC12细胞凋亡起到保护作用,从而推测VSOR Cl-通道在Aβ诱导PC12细胞凋亡时可能被激活。且推测氯通道阻断剂对Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡的下调作用是通过抑制JNK磷酸化实现的。
论文目录
相关论文文献
- [1].JNK通路在氯通道阻断剂抑制Aβ_(25-35)诱导细胞凋亡中的作用[J]. 中国老年学杂志 2008(04)
- [2].氯通道阻断剂5-硝基-2-(3-苯丙胺)苯甲酸在内皮素-1对体外培养牛角膜内皮细胞增殖中的影响[J]. 新乡医学院学报 2010(06)
- [3].人急性淋巴细胞白血病细胞容积激活性氯电流的研究[J]. 中国病理生理杂志 2011(04)
- [4].小檗碱激活人结肠癌细胞容积敏感的氯通道[J]. 生理学报 2011(06)
- [5].氯通道阻断剂和白头翁皂苷的协同溶血作用[J]. 中国药理学通报 2012(10)
- [6].蟾蜍灵激活低分化鼻咽癌细胞氯通道[J]. 中国病理生理杂志 2011(04)
- [7].丹参酮ⅡA对低分化鼻咽癌细胞氯通道的激活作用[J]. 中国药理学通报 2011(09)
- [8].乙醇激活的鼻咽癌细胞氯电流的分子机制[J]. 中国病理生理杂志 2014(07)
- [9].氯通道阻断剂对NO诱导离体大鼠海马神经元凋亡的保护作用[J]. 中国药理学通报 2009(09)
- [10].低分化鼻咽癌细胞的自发氯电流特性[J]. 山东医药 2014(23)
- [11].酒精对胰腺腺泡细胞氯电流的作用[J]. 广东医学 2014(16)
- [12].熊果酸激活低分化鼻咽癌细胞氯通道和减小细胞容积[J]. 生理学报 2012(06)
- [13].低渗诱导高分化鼻咽癌细胞CNE-1容积激活性氯电流[J]. 中国病理生理杂志 2009(06)