论文摘要
目的:观察骨髓间充质干细胞与Rho分子信号通路的阻断剂盐酸法舒地尔(HA1077)对全层皮肤缺损的修复作用。方法:(1)兔骨髓间充质干细胞(MSCs)的分离、培养、鉴定和向表皮细胞分化趋向的实验研究:抽取健康新西兰大耳白兔骨髓,采用直接贴壁法(全骨髓培养法)培养骨髓间充质干细胞,48h后首次更换培养基,弃去未贴壁的细胞,每隔2-3天换液1次,接近融和时按1:2或1:3比例传代培养,留取第3-5代备用;采用免疫组织化学和流式细胞仪对所培养细胞进行鉴定。扩增培养3代后以70%完全培养基+30%成纤维细胞培养基上清液+10 ng/LEGF诱导分化,倒置显微镜下观察细胞形态的变化,并于诱导后7d运用免疫组织化学方法检测CK19、β1的表达。(2)HA1077与骨髓间充质干细胞共同应用修复全层皮肤缺损的实验研究:①将18只Wistar大鼠背部左右两侧各置备一直径为2cm的圆形皮肤缺损,缺损深至皮下。随机分为六组每三只动物为一组,将5种不同剂量的HA1077(每个创面0.5ml)应用于皮肤缺损创面并设立一空白对照组,治疗后以创面面积的变化及组织学改变评价愈合质量。②取新西兰大耳白兔12只,随机分为六组:空白对照组(A组)、EGF对照组(B组)、MSCs治疗组(C组)、诱导细胞治疗组(D组)、MSCs+HA1077治疗组(E组)和诱导细胞+HA1077治疗组(F组)。在背部脊柱两侧1cm处由前至后制备6个直径为3cm的圆形皮肤缺损(每侧各3个),深至皮下。创面按分组要求注射药品和细胞创面按分组要求注射药品:MSCs及诱导细胞(诱导细胞为经诱导培养基诱导分化7天后所收集的细胞)浓度均为2×106/ml,每个创面注射细胞悬液1ml;HA1077浓度根据前一实验结果选定,每一创面注射0.5ml。细胞悬液及药品均直接注射至受试动物创面组织内。于伤后第3、7、14d用透明膜覆盖创面,并计算创面愈合指数,计算各组平均愈合时间。伤后3、7、14、21d按分组随机选择动物创面取创面组织行常规组织学(HE染色)检查。统计分析:本实验所有数据均以均数±标准差( x±s)表示,采用SPSS统计分析软件进行方差分析及t检验。结果:(1)全骨髓培养48h后可见部分散在圆形贴壁细胞,5 d左右可见细胞集落,10 d后形成集落的数目、大小明显增加,细胞逐渐融合成片,培养至14d左右时细胞融合达80%-90%。传代后4h多数细胞贴壁变形,生长迅速,约7 d左右达完全融合,即可继续传代。细胞化学检测本实验分离、培养的细胞CD34(-)、CD44(+)、CD105(+),可以证明所培养的细胞为较纯的MSCs,流式细胞结果进一步证实该结果。MSCs经诱导培养基诱导7d后可见细胞由原来的长梭形成纤维细胞状结构逐渐变短,细胞紧密排列成片,并可表达CK19、β1等标志。(2)①大鼠各组创面面积随伤后时间延长而逐渐缩小,其中以应用20μmol/LHA1077组创面缩小更为明显。②C、D、E、F四组在各检测时间点愈合指数均明显大于A、B两组(P<0.05),其中E组、F组愈合指数又明显大于其它两治疗组(P<0.05)。E组和F组的平均愈合时间分别为17.25±1.29天和17.67±1.25也明显快于其他组别(P<0.05),并且在皮肤愈合的病理结构上该两组也明显优于其他各组。但C组与D组之间、E组与F组之间无论愈合指数还是平均愈合时间均无显著性差异(P>0.05)。结论:(1)应用本实验方法,可以分离、纯化培养兔骨髓间充质干细胞,所培养的MSCs体外生长稳定、增殖速度快、可连续传代,可用于MSCs功能及应用的进一步研究。(2)MSCs在成纤维细胞培养上清液联合EGF的体外培养条件下有向表皮细胞诱导分化的趋向。(3)HA1077对MSCs修复全层皮肤缺损创面具有促进作用。
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