联合运用PEG3启动子和sTRAIL基因对人恶性畸胎瘤抑制作用的初步研究

联合运用PEG3启动子和sTRAIL基因对人恶性畸胎瘤抑制作用的初步研究

论文摘要

恶性肿瘤是严重危害人类健康的疾病之一,是继心、脑血管疾病之后引起人类死亡最常见的致死性疾病。传统的治疗以放疗、化疗结合手术治疗为主,但在过去的二十年里,肿瘤患者的生存率未有明显提高。其主要原因是因为对放疗、化疗药物的耐受及术后肿瘤转移和复发。肿瘤干细胞是一类具干细胞特性,极小数量细胞就能致瘤的细胞,是肿瘤发生、转移及复发的根源。人恶性畸胎瘤是一类发病率较低,但术后复发致死率较高的恶性肿瘤,其术后复发的5年生存率仅3%。人胚胎癌细胞系(NTERA-2)来源于人类睾丸畸胎瘤,具有体外形成三个胚层—外胚层、内胚层及中胚层的能力,同时表达一系列的胚胎干细胞标志,并具拟胚体,细胞单克隆形成能力,体内也具三胚层分化能力,因此,NTERA-2细胞被用作胚胎干细胞的研究模型并被认为是胚胎干细胞的恶性对照物——肿瘤干细胞。所以,NTERA-2细胞及畸胎瘤被认为是肿瘤干细胞基因治疗研究的最理想的模型。肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体是一个Ⅱ型膜蛋白,属于肿瘤坏死因子家族的典型成员,具有引起大多数肿瘤细胞凋亡,而对正常组织细胞无细胞毒的特性,因此,被认为是最有希望的抗肿瘤分子武器。其膜外部分即可溶性TRAIL (sTRAIL),氨基酸编码114-281,是引起肿瘤细胞凋亡的功能部分。大鼠progression-elevated gene-3 (PEG3)基因启动子是已被鉴定在癌症细胞中特异性高表达的启动子,萤光素双报告基因系统研究表明,PEG3启动子在大多肿瘤细胞系中活性高,而在正常的组织细胞中活性低或检测不到,我们的研究表明,PEG3启动子在胚胎干细胞中的活性极低,因此,PEG3启动子可能是作为肿瘤基因治疗,特别是肿瘤干细胞基因治疗的理想启动子,可能在肿瘤基因治疗过程中有效地解决肿瘤抑制基因的靶向问题。在本课题中,我们用PEG3启动子替换腺相关病毒中的CMV启动子,构建了治疗性载体AAV-PEG-sTRAIL,将sTRAIL基因转入NTERA-2细胞中,流式细胞仪检测到23.1±2.3%早期凋亡细胞;荧光显微镜下可观察到Hoechst 33258染色浓缩的细胞核,细胞中期凋亡的标志。荧光定量PCR检测sTRAIL的四个配体,诱导配体1(DcR1)、诱导配体2(DcR 2)、死亡受体(DR4)和死亡受体(DR5),结果表明DcR1、DcR 2表达量变化极小,但DR4和DR5有3倍以上表达量上升,Western blot检测了Caspase-3蛋白表达量,结果表明,转染sTRAIL基因的NTERA-2细胞可检测到19KD分离的Caspase-3,表明sTRAIL基因已经引起了NTERA-2细胞凋亡,转染sTRAIL基因与未转染sTRAIL基因的细胞致瘤研究表明,转染组4只NOD-SCID小鼠,60天仅一只小鼠致瘤,致瘤率为25%,而未转染组4只NOD-SCID小鼠,40天全部致瘤,致瘤率为100%,荷瘤小鼠治疗结果表明,sTRAIL基因治疗组的生存期比PBS及空载体治疗组明显延长,具有统计学意义(P=0.044),肿瘤体积较空载体及PBS对照组小;AAV-PEG-sTRAIL载体尾静脉注射后细胞毒研究表明,注射组小鼠的谷丙转氨酶和谷草转氯酶较对照组小鼠相比,未有明显的变化,且正常范围之内;HE染色表明,实验组小鼠的心、肝、脾、肺、肾均未出现可检测的组织坏死。sTRAIL基因对NTERA-2细胞及畸胎瘤的抑制作用,以及对正常组织缺乏可检测的细胞毒作用说明sTRAIL基因在PEG3启动子的驱动下,可对人恶性畸胎瘤进行有效的抑制。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 专业名词缩写中英文对照表
  • 技术路线图
  • 前言
  • 第一章 材料与方法
  • 一 材料
  • 1 主要材料
  • 2 主要试剂
  • 3 主要仪器
  • 4 质粒和细菌
  • 二 方法
  • 1 感受态菌种的制备
  • 2 细胞和组织总RNA的获得
  • 3 大鼠基因组DNA获得
  • 4 人全血gDNA的抽提
  • 5 RNA逆转录得到cDNA
  • 6 NTERA-2细胞培养
  • 7 hTERT及PEG3启动子和sTRAIL基因扩增
  • 8 胶回收扩增产物—基因
  • 9 基因与T载体连接
  • 10 T-sTRAIL T-PEG3及T-hTERT质粒抽提
  • 11 T-sTRAIL T-PEG3及T-hTERT基因阳性克隆PCR和酶切签定
  • 12 pAAV-PEG3/hTERT-sTRAIL治疗载体及PGL3-PEG3载体的构建
  • 13 质粒的中量制备
  • 14 pAAV-PEG3/hTERT-sTRAIL表达载体及PGL3-PEG3/hTER在细胞中的表达
  • 15 报道基因荧光素酶活性分析
  • 16 NTERA-2细胞胚胎全能性基因及畸胎瘤三胚层分化基因PCR扩增
  • 17 流式细胞仪检测CD133、SSEA-4、ABCG2、TRA-1-60
  • 18 早期凋亡检测
  • 19 中期凋亡检测
  • 20 半定量、定量RT-PCR检测
  • 21 Western blot的步骤
  • 22 体外成瘤实验
  • 23 动物模型构建及治疗
  • 24 肿瘤体积测量,荷瘤SCID小鼠称重
  • 25 细胞毒实验
  • 26 免疫组化
  • 27 TUNUL检测
  • 28 HE染色
  • 29 拟胚体形成
  • 30 统计分析
  • 第二章 实验结果
  • 1 PEG3和hTERT启动子扩增
  • 2 sTRAIL基因扩增
  • 3 AAV-PEG-sTRAIL及AAV-hTERT-sTRAIL治疗载体的构建
  • 4 PGL3-PEG3萤光素报告基因载体的构建
  • 5 PEG3启动子在不同细胞系中转基因表达能力分析
  • 6 NTERA-2细胞全能基因表达分析
  • 7 NTERA-2细胞CD133、ABCG2、SSEA-4、TRA-1-60表达研究
  • 8 NTERA-2细胞拟胚体形成研究
  • 9 NTERA-2细胞和ES细胞早期凋亡检测
  • 10 NTERA-2细胞中期凋亡检测
  • 11 半定量RT-PCR检测sTRAIL基因表达
  • 12 定量PCR检测sTRAIL基因的受体表达
  • 13 Caspase-3 Western blot检测
  • 14 体外成瘤实验结果
  • 15 NTERA-2细胞体内三胚层分化及全能性检测
  • 16 荷瘤SCID小鼠治疗结果
  • 17 细胞毒实验结果
  • 第三章 讨论
  • 一 肿瘤特异性启动子的选择
  • 二 可溶性TRAIL(sTRAIL)基因的细胞毒作用
  • 三 基因治疗过程中治疗载体的选择
  • 小结
  • 参考文献
  • 综述:肿瘤干/祖细胞研究进展
  • 致谢
  • 攻读学位期间的主要研究成果
  • 相关论文文献

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