(S)-2-羟基-4-苯基丁酸的回收与转化

(S)-2-羟基-4-苯基丁酸的回收与转化

论文摘要

(R)-2-羟基-4-苯基丁酸((R)-HPBA)是合成血管紧张素转化酶抑制剂(ACEI)的关键手性中间体。目前工业上采用化学拆分法制备(R)-HPBA,但存在收率较低,成本高,无效对映体(匀-2-羟基-4-苯基丁酸((S)-HPBA)亟待回收等问题。本文对((S)-HPBA的回收及转化为有效对映体(R)-HPBA,并对拆分剂葡辛胺的回收与循环利用进行了较为系统的研究,为(S)-HPBA的工业回收及转化提供依据。电位滴定法测得298.2K下(S)-HPBA在水中的电离常数pKa为3.81。用静态法测定了(S)-HPBA在单一溶剂(乙酸乙酯、水和甲苯)中及在不同pH值水溶液中的溶解度,并分别进行了关联。从收率和工业适用性角度,确定了酸析反应结晶和水中降温结晶为(S)-HPBA的较适宜的分离和纯化方法,回收(S)-HPBA的纯度达98%以上,收率为68.7%。从工业适用性角度,乙醇钠优于氢化钠,用于(S)-HPBA的乙酯((匀-2-羟基-4-苯基丁酸乙酯((S)-HPBE))的消旋,较适宜的条件为:温度为70℃C-90℃C,乙醇钠为底物摩尔量的9%-15%,甲苯量为10倍(体积质量比)于底物的质量;无溶剂消旋优于在甲苯中消旋,较适宜的条件为:温度70℃C-90℃C,乙醇钠为底物摩尔量的6%-9%;以上收率均在80%以上。建立了无溶剂消旋反应动力学模型,关联了反应温度和催化剂用量与反应速率的关系,方程相关性为0.996,均方差我0.00135,平均相对偏差为5.6%。(S)-HPBA在乙酸酐和乙酸钠的作用下可消旋,完全消旋时间随着反应温度的升高或乙酸酐用量的增加而缩短,较适宜的工艺为:140℃C下,乙酸酐的用量为3-4倍于(S)-HPBA的摩尔量,2h内可完全消旋。用构型反转法将(S)-HPBA转化为其对映异构体(S)-HPBA,从工业适用性角度考虑,较适宜工艺为:在三乙胺作用下(S)-HPBE与对甲苯磺酰氯反应得(S)-2-对甲基苯磺酰氧基-4-苯基丁酸乙酯,再与丙酸钾作用,得(R)-2-丙酰氧基-4-苯基丁酸乙酯,最后水解为(S)-HPBA,反转率为66.3%,收率为72.4%。用反应结晶法对葡辛胺进行回收和纯化,碱浓度和滴加速度分别为lmol/L和0.1mL/min,滴加终点为pH=12,回收葡辛胺收率为89.8%,纯度达99.9%,得规则长方体葡辛胺晶体。用回收葡辛胺拆分(±)-HPBA,(R)-HPBA的收率为28.3%,比旋光度为7.015。,与工厂值相近,回收葡辛胺可用于循环拆分。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 绪论
  • 1.1 降血压药物概述
  • 1.2 ACEI药物及其关键中间体
  • 1.3 中间体(R)-HPBA的制备方法
  • 1.3.1 化学不对称合成法
  • 1.3.2 生物不对称合成法
  • 1.3.3 生物拆分法
  • 1.3.4 化学拆分法
  • 1.4 本课题的选题背景和研究内容
  • 1.4.1 本课题的选题背景
  • 1.4.2 研究内容和创新点
  • 第二章 (S)-2-羟基-4-苯基丁酸的回收
  • 2.1 引言
  • 2.2 电离常数及溶解度的测定方法
  • 2.2.1 电离常数测定方法
  • 2.2.1.1 直接测定法
  • 2.2.1.2 电位滴定法
  • 2.2.1.3 电导率法
  • 2.2.1.4 光谱分析法
  • 2.2.1.5 毛细管电泳法
  • 2.2.2 溶解度测定方法
  • 2.2.2.1 静态法
  • 2.2.2.2 动态法
  • 2.3 实验部分
  • 2.3.1 实验仪器与试剂
  • 2.3.1.1 实验仪器
  • 2.3.1.2 实验试剂
  • 2.3.2 (S)-HPBA高效液相色谱检测条件
  • 2.3.3 (S)-HPBA HPLC检测标准曲线的建立
  • 2.3.4 (S)-HPBA电离常数的测定
  • 2.3.5 (S)-HPBA在单一溶剂中溶解度的测定
  • 2.3.6 (S)-HPBA在不同pH水溶液中溶解度的测定
  • 2.3.7 (S)-HPBA的分离与纯化
  • 2.4 结果与讨论
  • 2.4.1 (S)-HPBA HPLC检测的标准曲线
  • 2.4.2 (S)-HPBA的电离常数
  • 2.4.3 (S)-HPBA在单一溶剂中的溶解度
  • 2.4.4 (S)-HPBA在单一溶剂中的溶解度与温度的关联
  • 2.4.4.1 Apelblat方程
  • 2.4.4.2 活度系数模型
  • 2.4.6 不同pH值水溶液中(S)-HPBA的溶解度及关联
  • 2.4.6.1 (S)-HPBA溶解度与pH值的关系
  • 2.4.6.2 (S)-HPBA溶解度与pH值的关联
  • 2.4.7 (S)-HPBA的分离及纯化
  • 2.5 本章小结
  • 第三章 (S)-2-羟基-4-苯基丁酸及乙酯的消旋化
  • 3.1 引言
  • 3.2 消旋方法
  • 3.2.1 碱催化消旋
  • 3.2.2 酸催化消旋
  • 3.2.3 酶催化消旋
  • 3.2.4 经由席夫碱中间体消旋
  • 3.2.5 氧化还原反应消旋
  • 3.2.6 其他消旋方法
  • 3.3 (S)-HPBE和(S)-HPBA的消旋及机理
  • 3.3.1 (S)-HPBE的消旋及机理
  • 3.3.2 (S)-HPBA的消旋及机理
  • 3.4 消旋反应动力学
  • 3.5 实验部分
  • 3.5.1 实验仪器与试剂
  • 3.5.2 手性检测方法
  • 3.5.2.1 比旋光度的测定
  • 3.5.2.2 对映体过量的测定
  • 3.5.2.3 (R,S)-HPBE手性液相色谱分析方法的建立
  • 3.5.3 主要试剂的制备和预处理
  • 3.5.3.1 (S)-HPBE的合成
  • 3.5.3.2 无水甲苯的制备
  • 3.5.4 (S)-HPBE的消旋化
  • 3.5.4.1 氢化钠催化(S)-HPBE在甲苯中消旋
  • 3.5.4.2 乙醇钠催化(S)-HPBE在甲苯中消旋
  • 3.5.4.3 乙醇钠催化(S)-HPBE无溶剂消旋
  • 3.5.4.4 乙醇钠催化(S)-HPBE无溶剂消旋动力学测定
  • 3.5.5 (S)-HPBA的消旋化
  • 3.6 结果与讨论
  • 3.6.1 (±)-HPBE手性液相色谱分析方法
  • 3.6.2 氢化钠催化(S)-HPBE的消旋
  • 3.6.3 乙醇钠催化(S)-HPBE在甲苯中消旋
  • 3.6.4 (S)-HPBE无溶剂消旋
  • 3.6.5 (S)-HPBE无溶剂消旋反应动力学
  • 3.6.5.1 动力学方程
  • 3.6.5.2 温度的影响
  • 3.6.5.3 催化剂的影响
  • 3.6.5.4 动力学模型的关联
  • 3.6.6 (S)-HPBA的消旋化
  • 3.7 本章小结
  • 第四章 (S)-2-羟基-4-苯基丁酸乙酯的构型反转
  • 4.1 引言
  • 4.2 构型反转概述
  • 4.2.1 手性醇的构型反转
  • 4.2.2 (S)-HPBE构型反转
  • 4.3 实验部分
  • 4.3.1 实验仪器及试剂
  • 4.3.1.1 实验仪器
  • 4.3.1.2 实验试剂
  • 4.3.2 无水溶剂的制备和试剂的预处理
  • 4.3.2.1 无水三乙胺的制备
  • 4.3.2.2 无水吡啶的制备
  • 4.3.2.3 无水二氯甲烷的制备
  • 4.3.2.4 对甲苯磺酰氯的纯化
  • 4.3.2.5 玻璃仪器的洗涤与干燥
  • 4.3.3 反转率的计算
  • 4.3.4 (S)-2-甲基磺酰氧基-4-苯基丁酸乙酯的合成
  • 4.3.5 (S)-2-对甲基苯磺酰氧基-4-苯基丁酸乙酯的合成
  • 4.3.6 (S)-2-对硝基苯磺酰氧基-4-苯基丁酸乙酯的合成
  • 4.3.7 (R)-2-丙酰氧基-4-苯基丁酸乙酯的合成
  • 4.3.8 (R)-2-乙酰氧基-4-苯基丁酸乙酯的合成
  • 4.3.9 (R)-HPBE的合成
  • 4.3.10 (R)-HPBA的合成
  • 4.4 结果与讨论
  • 4.4.1 缚酸剂对反应的影响
  • 4.4.2 磺酰氯试剂的影响
  • 4.4.3 亲核试剂的影响
  • 4.5 本章小结
  • 第五章 葡辛胺的回收与循环利用
  • 5.1 引言
  • 5.2 (±)-HPBA的拆分过程
  • 5.3 实验部分
  • 5.3.1 实验仪器与试剂
  • 5.3.1.1 实验仪器
  • 5.3.1.2 实验试剂
  • 5.3.2 葡辛胺蒸发光散射高效液相色谱检测条件的建立
  • 5.3.3 高效液相色谱检测葡辛胺标准曲线的建立
  • 5.3.4 葡辛胺的回收
  • 5.3.5 葡辛胺的纯化
  • 5.3.6 葡辛胺拆分(±)-HPBA
  • 5.4 结果与讨论
  • 5.4.1 高效液相色谱检测葡辛胺的标准曲线
  • 5.4.2 葡辛胺的回收与纯化
  • 5.4.3 回收葡辛胺的循环利用
  • 5.5 本章小结
  • 第六章 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 个人简历
  • 相关论文文献

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