论文摘要
CTB-LK是将蚓激酶(LK)和霍乱毒素B型亚单位(CTB)通过基因融合,并在毕赤酵母中获得表达的一种新型抗血栓肠吸收蛋白,经过体外和小鼠体内实验均证明CTB-LK具有很好的预期酶活和高效肠吸收特性。为提高CTB-LK的表达量,本研究以实验室已有的CTB-LK基因为基础,在不改变所编码氨基酸的情况下,使用基因重叠延伸PCR(gene SOEing PCR)技术,对该基因中4个编码氨基酸的密码子位点进行定点突变,将4个毕赤酵母稀有密码子分别突变成毕赤酵母高频密码子。并构建了优化基因CTB-LKA的中间克隆载体pBluescript SK-CTB-LKA和毕赤酵母表达载体pPIC9k-CTB-LKA,电击转化毕赤酵母GS115,筛选获得了CTB-LKA毕赤酵母表达菌株。对CTB-LKA毕赤酵母发酵产物进行的SDS-PAGE实验表明,在45kD处出现了预期条带。在纤维平板溶栓实验中,发酵产物表现出纤维蛋白溶解酶的活性,表明CTB-LKA蛋白在毕赤酵母内得到了正确的表达和折叠。与同等体积CTB-LK毕赤酵母表达菌株发酵产物的SDS-PAGE电泳条带对比,前者在45kD处的条带更明显。通过使用纤维蛋白平板实验对CTB-LKA毕赤酵母表达菌株发酵产物溶纤活性测定结果表明,在BMGY/BMMY培养基中诱导36h后,酶活力达2450mm2/mL,比CTB-LK毕赤酵母表达菌株发酵产物酶活性提高了1.9倍。以上结果表明,经过密码子优化的CTB-LKA基因与未经过密码子优化的CTB-LK基因相比在毕赤酵母内的表达量得到了提高。
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中文摘要ABSTRACT第一章 绪论1.1 蚓激酶及其研究进展1.1.1 概述1.1.2 蚓激酶的生理学特征1.1.3 蚓激酶的溶栓机理1.1.4 蚓激酶的临床应用1.1.5 蚓激酶的基因工程表达研究1.2 霍乱毒素(cholera toxin,CT)及其B 型亚单位(CTB)1.3 表达载体的密码子偏好性及优化1.3.1 生物密码子分析现状1.3.2 密码子偏好性1.3.3 密码子的优化1.4 毕赤酵母表达系统1.4.1 毕赤酵母表达系统的优点1.4.2 毕赤酵母表达宿主菌1.4.3 毕赤酵母表达载体1.4.4 外源蛋白在毕赤酵母中的表达1.4.5 巴斯德毕赤酵母的生物学特性1.4.6 巴氏毕赤酵母的分子生物学特性1.4.7 影响异源蛋白在巴斯德毕赤酵母中表达水平的因素第二章 对CTB-LK 基因密码子的优化2.1 材料和试剂2.1.1 引物2.1.2 工具酶和试剂2.2 实验方法2.2.1 DNA 的琼脂糖凝胶电泳2.2.2 从琼脂糖中回收DNA2.2.3 普通PCR2.2.4 重叠延伸PCR 技术2.3 结果与分析第三章 毕赤酵母表达载体构建3.1 材料和试剂3.1.1 质粒、菌株和引物3.1.2 主要实验仪器3.1.3 主要试剂3.1.4 培养基3.1.5 主要溶液3.2 实验方法3.2.1 大肠杆菌感受态细胞的制备与转化3.2.2 小规模提取大肠杆菌质粒法(CTAB 法)3.2.3 DNA 的限制酶消化3.2.4 DNA 的连接反应3.2.5 菌体生长量的检测3.2.6 SDS-聚丙烯酰胺凝胶的制备3.3 结果与分析3.3.1 中间载体pBluescript SK-CTB -LKA 的构建3.3.2 毕赤酵母表达CTB-LKA 的载体构建3.4 实验操作过程中的遇到的一些问题3.4.1 酶切注意事项3.4.2 外源基因与表达载体的连接3.4.3 PCR 常见问题3.5 小结第四章 CTB-LKA 在毕赤酵母中的表达及验证4.2 实验材料4.2.1 质粒和菌株4.2.2 主要仪器4.2.3 试剂4.2.4 培养基及主要溶液4.3 实验方法4.3.1 毕赤酵母的转化4.3.2 转化子的筛选4.3.3 酵母菌落PCR 筛选阳性克隆4.3.4 毕赤酵母总RNA 提取4.3.5 毕赤酵母的诱导表达4.3.6 发酵上清液中蛋白的提取4.3.7 SDS-PAGE 蛋白质凝胶电泳4.3.8 纤维蛋白平板检验生物活性4.4 结果讨论4.4.1 毕赤酵母的转化4.4.2 毕赤酵母的转化后G418 筛选4.4.3 菌落PCR 筛选效果4.4.4 纤维蛋白平板法测定外源蛋白活性4.4.5 上清液SDS-PAGE 检测第五章 结论参考文献发表论文和科研情况说明致谢
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CTB-LK密码子多点突变及其优化基因在毕赤酵母中的表达
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