论文摘要
目的:探讨Jagged-1在树突状细胞(dendritic cells,DCs)介导T细胞诱导同种异基因皮肤移植免疫耐受中的作用及其机制。方法:建立体外诱导小鼠骨髓来源DCs的模型,显微镜下观察Jagged-1对重组粒细胞—巨噬细胞集落刺激因子(rmGM-CSF)和白细胞介素4(rmIL-4)协同诱导的小鼠骨髓DCs形态学变化的影响;荧光标记单克隆抗体染色技术结合流式细胞仪检测Jagged-1对不同时间小鼠骨髓DCs分化标记CD11c及DCs成熟标记MHC-Ⅱ、CD86、CD80和CD40表达的影响;利用MTT法检测Jagged-1诱导的DCs、T细胞和DC-T细胞共培养体系中T细胞对同种异基因淋巴细胞增殖的影响;通过Luminex蛋白液相芯片技术和ELISA检测经Jagged-1处理的DCs、T细胞和DC-T细胞共培养体系上清中白细胞介素2(IL-2)、白细胞介素4(IL-4)、白细胞介素6(IL-6)、白细胞介素10(IL-10)、白细胞介素12(IL-12)、干扰素γ(IFN-γ)、转化生长因子β(TGF-β)、肿瘤坏死因子α(TNF-α)的表达水平;建立同种异基因小鼠皮肤移植模型,磁珠分选Jagged-1介导DC-T细胞共培养体系中CD4+T细胞,输入受体小鼠,观察皮肤移植物存活时间和移植物病理变化,检测受体外周血中CD4+CD25+Treg的表达水平,小鼠混合淋巴细胞反应和迟发型超敏反应。结果:Jagged-1诱导的细胞具有典型成熟DCs的形态特征,培养第6d和12d时,Jagged-1组CD11c细胞平均荧光强度(MFI)均明显增高(P<0.01与P<0.05);Jagged-1组CD80、CD40和MHC-Ⅱhigh表达细胞的阳性率明显高于对照组(P<0.05),且CD80和CD40的MFI也明显增高(P<0.01与P<0.05),而CD86的MFI无明显变化(P>0.05);Jagged-1诱导的DCs、T细胞和DC-T细胞均不同程度抑制IFN-γ、IL-2、IL-12和TNF-α等Th1型细胞因子的表达,显著升高TGF-β、IL-6、IL-4或IL-10等Treg或Th2型细胞因子水平;在混合淋巴细胞反应(MLR)中,Jagged-1组DCs、T细胞和DC-T细胞共培养体系中T细胞刺激同种异基因淋巴细胞增殖反应性均显著降低(P<0.01),DAPT能在一定程度上逆转Jagged-1的作用;Jagged-1介导的DCs直接接触作用后的CD4+T细胞能延长同种异基因小鼠移植皮片存活时间,皮肤移植物平均存活38.6d,显著高于对照组和DAPT+Jagged-1组(P<0.01),Jagged-1处理组移植皮片内浸润的炎症细胞数量明显减少;在MLR中,Jagged-1处理组小鼠淋巴细胞对供体小鼠淋巴细胞呈现低反应性(P<0.01),且加入IL-2逆转效果不明显,而对第三方无关供体KM小鼠淋巴细胞表现强烈的增殖反应;Jagged-1处理组小鼠在迟发型超敏反应中也表现出显著的低反应性(P<0.01);Jagged-1组小鼠外周血CD4+CD25+Treg与对照组(P<0.01)和DAPT+Jagged-1组(P<0.05)有显著差异,DAPT能阻断Jagged-1上调CD4+CD25+Treg的作用。结论:Jagged-1能诱导骨髓来源DCs的分化和成熟;Jagged-1可以通过抑制IFN-γ、IL-12和TNF-α等Th1型细胞因子表达,促进IL-4、IL-10等的表达诱导外周T细胞向Th2细胞分化,同时诱导DCs促进T细胞向Th2型分化,并减弱DCs刺激淋巴细胞增殖能力;Jagged-1联合DCs处理的CD4+T细胞诱导小鼠获得供体抗原特异性的免疫耐受,与CD4+CD25+Treg数量相对升高,改变Th1/Th2细胞因子平衡极化有关,这些发现可能为临床移植耐受的诱导提供新的治疗靶点。
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