牛干扰素-τ基因的克隆及其在大肠杆菌中的融合表达

牛干扰素-τ基因的克隆及其在大肠杆菌中的融合表达

论文摘要

本研究采用克隆测序技术,首次测定了中国荷斯坦奶牛干扰素-τ(bIFN-τ)成熟蛋白基因的编码区(CDS)全序列(GenBank登录号:DQ680846、DQ680847),并利用生物信息学方法对bIFN-τ的结构和功能进行了预测,结果表明:bIFN-τ成熟蛋白基因的CDS全序列长度为519bp,编码172个氨基酸的blFN-τ。对bIFN-τ成熟蛋白基因的CDS全序列和Gerd3ank上已公布的相关序列进行聚类分析,可将其聚为4类,发现了新的一类bIFN-τ(τ4)和六种新亚型(τle、τ3f、τ3g、τ3h、τ4a、τ4b)。DQ680846属于τ4类的一种亚型,标记为τ4a;DQ680847属于τ3类的一种亚型,标记为τ3f。各bIFN-τ基因核苷酸序列间的同源性在92.7%~99.8%之间,推导氨基酸序列间的同源性在88.5%~99.4%之间;τ4a、τ3f与其他bIFN-τ基因核苷酸序列间的同源性分别在94.0%~97.1%、92.9%~99.6%之间,推导氨基酸序列间的同源性分别在91.4%~96.0%、88.5%~99.4%之间。不同物种IFN-τ基因可聚为4类:普通牛与美洲野牛、水牛聚为一类;绵羊、山羊、麝香牛聚为另一类;大额牛、马鹿、麝香鹿聚为第三类:长颈鹿单独为一类。各物种IFN-τ基因核苷酸序列间的同源性在84.6%~99.2%之间,推导氨基酸序列间的同源性在68.4%~97.7%之间;中国荷斯坦奶牛bIFN-τ基因τ4a和τ3f与其他物种IFN-τ基因核苷酸序列间的同源性在87.7%~99.2%之间,推导氨基酸序列间的同源性在74.1%~97.7%之间。对bIFN-τ的结构和功能进行生物信息学预测,发现bIFN-τ氨基酸序列中有一个潜在的N-糖基化位点,Asn78可被糖基化。bIFN-τ中存在5个主要的疏水区,分别位于氨基酸序列的53~68位、75~86位、96~104位、114~121位和139~156位。bIFN-τ氨基酸序列中有6个潜在的磷酸化位点:Ser25、Ser137、Ser153、Ser155、Thr119和Tvr136。bIFN-τ的Cysl和Cys99、Cys29和Cys139各自形成两个二硫键,以维持其立体结构。bIFN-τ的三维结构是以5个α-螺旋为基础构成的,α-螺旋由111个氨基酸残基形成,占64.53%;螺旋之间为无规卷曲,由61个氨基酸残基形成,占35.47%。bIFN-τ氨基酸序列3~155位是包括IFN-α,β,ω,τ,δ等在内的Ⅰ型IFN家族的典型保守结构功能域。由此可以推测出bIFN-τ具有Ⅰ型IFN所共有的抗病毒、抗细胞增生、免疫调节等生物学功能。本研究将bIFN-τ基因定向克隆到原核表达载体pET-28a(+)中,构建了重组融合表达质粒pET-28a-bIFN-τ,转化大肠杆菌BL21(DE3),用IPTG诱导表达,优化表达条件,并初步纯化重组融合蛋白,结果表明:bIFN-τ基因在重组融合表达质粒pET-28a-bIFN-τ中的插入方向和读码框均正确;该基因已在大肠杆菌BL21(DE3)中实现了融合表达,其表达量占菌体总蛋白的20.68%。对表达条件进行了优化,其表达量可达28.84%。在37℃和30℃时进行诱导,融合蛋白的表达量高于25℃和20℃时的诱导;在诱导后1h就有融合蛋白表达,诱导后3h融合蛋白的表达量达到峰值。通过固定相金属离子亲和色谱(IMAC)方法纯化重组融合蛋白。咪唑浓度为300~500mmol/L的Elutionbuffer的纯化效果较好,纯化后的重组融合蛋白的浓度和纯度都很高。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 1 文献综述
  • 1.1 IFN-τ在妊娠识别中的作用机理
  • 1.1.1 溶黄体机制
  • 1.1.2 IFN-τ与妊娠识别过程
  • 1.1.3 IFN-τ基因的结构
  • 1.1.4 IFN-τ的同源性
  • 1.1.5 IFN-τ的表达及表达调控
  • 1.1.6 IFN-τ的妊娠识别作用机制
  • 1.2 IFN-τ基因的体外重组表达研究
  • 1.3 本研究的目的意义和内容
  • 2 材料与方法
  • 2.1 试验材料
  • 2.1.1 试验材料的采集
  • 2.1.2 载体与菌株
  • 2.1.3 生物信息学网络资源及应用软件
  • 2.1.4 主要试剂
  • 2.1.5 试验溶液的配制
  • 2.1.6 主要仪器设备
  • 2.2 试验方法
  • 2.2.1 基因组DNA的提取
  • 2.2.2 引物设计
  • 2.2.3 bIFN-τ基因PCR扩增
  • 2.2.4 bIFN-τ基因PCR产物的克隆
  • 2.2.5 测序与序列分析
  • 2.2.6 bIFN-τ的生物信息学预测
  • 2.2.7 原核重组表达质粒的构建
  • 2.2.8 bIFN-τ在大肠杆菌中的诱导表达及表达产物分析
  • 2.2.9 重组融合蛋白的纯化
  • 3 结果与分析
  • 3.1 基因组DNA的提取
  • 3.2 bIFN-τ基因PCR扩增
  • 3.3 重组克隆质粒的构建和鉴定
  • 3.4 测序与序列分析
  • 3.4.1 序列的碱基组成及氨基酸组成
  • 3.4.2 bIFN-τ基因的聚类分析
  • 3.4.3 bIFN-τ基因的同源性分析
  • 3.5 bIFN-τ的生物信息学预测
  • 3.5.1 bIFN-τ糖基化位点预测
  • 3.5.2 bIFN-τ疏水性预测
  • 3.5.3 bIFN-τ磷酸化位点预测
  • 3.5.4 bIFN-τ二硫键预测
  • 3.5.5 bIFN-τ二级结构预测
  • 3.5.6 bIFN-τ三级结构预测
  • 3.5.7 bIFN-τ保守结构功能域预测
  • 3.6 原核重组表达质粒的构建和鉴定
  • 3.7 bIFN-τ在大肠杆菌中的诱导表达及表达产物分析
  • 3.7.1 bIFN-τ的诱导表达
  • 3.7.2 bIFN-τ诱导表达条件的优化
  • 3.7.3 表达产物的可溶性分析
  • 3.8 重组融合蛋白的纯化
  • 4 讨论
  • 4.1 克隆片段的设计
  • 4.2 克隆载体的选择
  • 4.3 bIFN-τ基因的序列分析
  • 4.4 bIFN-τ的生物信息学预测
  • 4.5 表达宿主菌的选择
  • 4.6 表达载体的选择
  • 4.7 表达方式的选择
  • 4.8 bIFN-τ在大肠杆菌中的诱导表达及表达产物分析
  • 4.9 重组融合蛋白的纯化
  • 5 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 附录
  • 攻读硕士学位期间发表的学术论文
  • 相关论文文献

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