中国樱桃S基因型及S-RNase基因克隆表达研究

中国樱桃S基因型及S-RNase基因克隆表达研究

论文摘要

蔷薇科果树的大多数树种为二倍体,表现出配子体自交不亲和性。中国樱桃(Prunus psedocerasus L.)是起源于我国的自交亲和的四倍体的李属果树种质资源,具有悠久的栽培历史和丰富的品种类型。本文以中国樱桃的五个品种为试材,确定了五个品种的S基因型,克隆了花柱S-RNase cDNA的全长序列,并做Northern杂交研究S-RNase基因的表达情况,以探讨中国樱桃自交亲和的S-RNase基因的分子基础。主要结果如下:1.利用李属S-RNase基因扩增的六对引物,对参试中国樱桃品种进行PCR扩增,经过优化PCR体系, EM-PC2consFD + EM-PC3consRD、PruC2 + PCER和Pa ConsⅠ-F + Pa ConsⅡ-R在不同品种上均可扩增出2-3条较亮的带,扩增效果较好,这三对引物适宜中国樱桃S-RNase基因的扩增。2.利用引物EM-PC2consFD + EM-PC3consRD对中国樱桃五个品种的基因组DNA进行PCR扩增,并克隆扩增条带。测序结果在GenBank上进行同源性比较表明:五个品种中包含了五种不同S-RNase基因,分别为S1-RNase(631bp)、S2-RNase (1432bp)、S3-RNase (1186bp)、S4-RNase (529bp)、S5-RNase (254bp),并在GenBank上注册,注册号分别为EU038300- EU038304。3.根据以上PCR扩增的结果,参试的5个品种经适宜引物扩增后,有3条或4条扩增带,其中包括亮带和弱带,都是中国樱桃的S-RNase基因。从而确定中国樱桃五个品种的S基因型,分别为藤县红(S1S3S4);大青叶(S1S3S4S5);大窝楼叶(S1S3S4);泰小红樱(S1 S2S3S4);莱阳矮樱(S1 S2S3S4)。4.在泰小红樱和莱阳矮樱花柱中分别克隆到中国樱桃两个S-RNase基因的cDNA全长序列,大小分别为811bp和832bp。两个基因分别包含从基因组克隆到的中国樱桃S1和S2编码区,所以分别命名为全长S1–RNase和S2–RNase,并在GenBank上注册,注册号分别为EU073938 (S1-RNase)和EU073939 (S2-RNase)。S1–RNase和S2–RNase全长序列与李属S–RNase的结构特征一致,具有蔷薇科李属S–RNase活性。5.Northern杂交结果显示在泰小红樱和莱阳矮樱花柱中分别有两个S–RNase高度表达,各有两个S–RNase没有表达。只有S1–RNase和S2–RNase有功能而S3–RNase和S4–RNase无功能,把S3–RNase和S4–RNase分别命名为S3m–RNase和S4m–RNase,‘m’表示S–RNase在花柱中突变导致的功能丧失。所以‘泰小红樱’和‘莱阳矮樱’的基因型可以写成S1S2S3mS4m。因此,无功能的花柱S基因S3m和S4m的积累可能导致中国樱桃的自交亲和。

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 1 引言
  • 1.1 配子体自交不亲和性研究进展
  • 1.1.1 花柱S-RNASE 基因研究进展
  • 1.1.2 S-RNASE 的结构与功能
  • 1.1.3 GSI 中SI 发生的可能机理
  • 1.2 李属(PRUNUS)自交(不)亲和性分子基础研究进展
  • 1.2.1 李属S-RNASE 基因及功能研究进展
  • 1.2.2 李属不同树种S-RNASE 基因特异PCR 的引物及其应用研究进展
  • 1.2.3 李属自交亲和分子基础研究
  • 1.3 多倍体自交亲和性研究
  • 1.4 果树多倍体的研究意义
  • 1.5 本研究的内容及目标
  • 2 材料与方法
  • 2.1 试验材料
  • 2.1.1 植物材料
  • 2.1.2 菌株和培养基
  • 2.1.3 酶及生化试剂
  • 2.1.4 PCR 引物
  • 2.2 试验方法
  • 2.2.1 基因组DNA 提取
  • 2.2.2 S-等位基因PCR 扩增及所用引物
  • 2.2.2.1 基因组S-等位基因PCR 扩增及所用引物
  • 3和S4 基因的特异性扩增'>2.2.2.2 中国樱桃S3和S4基因的特异性扩增
  • 2.2.3 花柱RNA 的提取
  • 2.2.4 反转录CDNA 第一链的合成
  • 2.2.5 3’RACE 和5’RACE 扩增及CDNA 全长的获得
  • 2.2.6 S-RNASE 基因特异片段的克隆及序列分析
  • 2.2.6.1 PCR 扩增产物的回收
  • 2.2.6.2 连接反应
  • 2.2.6.3 大肠杆菌感受态细胞的制备
  • 2.2.6.4 大肠杆菌感受态细胞的转化及阳性克隆的筛选测序
  • 2.2.7 DNA 序列测定及S 基因的的鉴定和命名
  • 2.2.8 地高辛(DIG)标记的NORTHERN 杂交分析
  • 2.2.8.1 花柱总RNA 提取
  • 2.2.8.2 杂交所用试剂配制
  • 2.2.8.3 甲醛变性胶电泳
  • 2.2.8.4 转膜
  • 2.2.8.5 探针的制备
  • 2.2.8.6 预杂交及杂交
  • 2.2.8.7 洗膜
  • 2.2.8.8 杂交结果的检测
  • 3 结果与分析
  • 3.1 中国樱桃S 基因型鉴定
  • 3.1.1 中国樱桃S 基因扩增的引物筛选与分析
  • 3.1.1.1 不同的引物组合对中国樱桃S-RNASE 基因的PCR 扩增电泳图比较
  • 3.1.1.2 6 对引物对中国樱桃的扩增效果评价
  • 3.1.2 中国樱桃五个品种S-RNASE 基因的鉴定
  • 3.1.2.1 中国樱桃S-RNASE 基因的克隆测序
  • 3.1.2.2 中国樱桃53 和54 基因的特异性扩增
  • 3.1.2.3 中国樱桃五个品种的S 基因型的确定
  • 3.1.3 中国樱桃 S-RNASES 氨基酸序列比较
  • 3.2 中国樱桃 S-RNASE 全长克隆及表达研究
  • 3.2.1 中国樱桃 S-RNASES 全长 CDNA 克隆和 NORTHERN 杂交分析
  • 3.2.2 两个中国樱桃 S-RNASES 全长 CDNA 序列分析
  • 4 讨论
  • 4.1 李属不同树种 S-RNASE 基因特异 PCR 的引物及其应用
  • 4.2 关于四倍体中国樱桃 S-RNASE 基因扩增后 PCR 条带的数量
  • 4.3 关于中国樱桃S-RNases 基因的命名和S基因型的确定
  • 4.4 关于花柱中S-RNase的活性
  • 4.5 关于无S-RNase的活性的S-RNase基因
  • 4.6 关于中国樱桃自交亲和的可能的原因
  • 5 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻读硕士学位期间发表论文情况
  • 相关论文文献

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