全反式维甲酸对猪脂肪细胞增殖分化与凋亡的影响

全反式维甲酸对猪脂肪细胞增殖分化与凋亡的影响

论文摘要

脂肪沉积包括脂肪细胞体积的增大和数目的增多。脂肪细胞体积的改变主要通过脂肪生成或脂肪溶解作用,脂肪细胞数目的改变包括前脂肪细胞增殖或前体脂肪细胞、脂肪细胞的凋亡或去分化。前体脂肪细胞分化为脂肪细胞的过程中,一系列基因时序表达促使了细胞最终分化成脂肪细胞。脂肪细胞分化及其调控的失常会引起肥胖、糖尿病、心脑血管等一系列的疾病。研究前体脂肪细胞增殖分化和凋亡的机理,通过调控脂肪细胞的体积和数量,可望为有效调控体脂沉积的有效途径。本研究以1-3 d健康长白仔猪为实验动物,以体外培养的前体脂肪细胞为研究对象,采用MTT法、RT-PCR、光学显微镜、油红O染色、油红O染色提取法、吖啶橙荧光染色和流式细胞术等方法,研究了全反式维甲酸(all-trans retinoic acid, ATRA)对猪脂肪细胞增殖、分化和凋亡的影响。得出如下研究结果:1、在不同浓度ATRA作用下,对猪脂肪细胞增殖能力的影响。结果表明,10 nmol/L、100 nmol/L ATRA促进前体脂肪细胞的增殖(p<0.05),1μmol/L、10μmol/L、25μmol/L ATRA则抑制前体脂肪细胞的增殖(p<0.05)。ATRA对脂肪细胞增殖的作用呈浓度和时间依赖性。2、光学显微镜、油红O染色法观察细胞分化过程中的形态变化,油红O染色提取法定量分析细胞内脂肪生成及细胞分化情况,结果表明,10 nmol/L和100 nmol/L ATRA均能促进脂肪细胞分化(p<0.05),而1μmol/L、10μmol/L、25μmol/L ATRA则抑制脂肪细胞的分化(p<0.05)。ATRA对猪脂肪细胞分化的作用呈浓度和时间依赖性。3、采用RT-PCR技术分析10 nmol/L、10μmol/L两种浓度ATRA对脂肪细胞分化早期分化标志基因LPL,和特异转录因子PPARγ2、C/EBPα和RARαmRNA表达的影响。结果显示,低浓度(10 nmol/L)ATRA对细胞的分化起明显的促进作用(p<0.05),下调其受体RARαmRNA的表达但上调LPL、PPARγ2、C/EBPαmRNA的表达;高浓度(10μmol/L)ATRA对细胞的分化起明显的抑制作用(p<0.05),上调RARαmRNA的表达但下调LPL、PPARγ2、C/EBPαmRNA的表达。提示ATRA可能通过调控RARα、LPL、PPARγ2、C/EBPαmRNA的表达发挥其促进或抑制脂肪细胞分化的生物学功能。4、利用吖啶橙荧光染色法观察不同浓度ATRA对前体脂肪细胞凋亡率的影响,结果表明,10μmol/L、25μmol/L、50μmol/L ATRA可以不同程度的诱导前体脂肪细胞的凋亡;采用流式细胞术和半定量RT-PCR技术分析10μmol/L ATRA不同处理时间对前体脂肪细胞凋亡的诱导作用,结果提示,10μmol/L ATRA可随时间依赖性诱导前体脂肪细胞的凋亡,同时可以下调抗凋亡基因Bcl-2的表达、而上调促凋亡基因Bax的表达。提示ATRA可能通过调控Bcl-2、Bax mRNA的表达发挥其诱导脂肪细胞凋亡的作用。综上所述,不同浓度ATRA对猪前体脂肪细胞增殖分化和凋亡的影响是不同的,以上研究从细胞和分子水平为ATRA调控体脂沉积提供了理论依据。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一部分 文献综述
  • 第一章 脂肪细胞的分化及其调控研究
  • 1.1 脂肪细胞的起源和分化过程
  • 1.2 脂肪细胞分化过程中的形态变化
  • 1.3 脂肪细胞分化的分子标志
  • 1.3.1 早期标志
  • 1.3.2 晚期标志
  • 1.4 促进脂肪细胞分化的转录因子和相关蛋白
  • 1.4.1 PPAR 家族
  • 1.4.2 C/EBP 家族
  • 1.4.3 螺旋-环-螺旋转录因子家族
  • 1.4.4 其他相关蛋白
  • 1.5 脂肪细胞分化的抑制因素
  • 1.5.1 肿瘤坏死因子-α
  • 1.5.2 前脂肪细胞因子-1
  • 1.5.3 C/EBP 未分化蛋白(CUP)
  • 1.5.4 其它可抑制脂肪细胞分化的物质
  • 第二章 脂肪细胞凋亡的研究进展
  • 2.1 细胞凋亡概述
  • 2.1.1 细胞凋亡的形态特征
  • 2.1.2 细胞变化的生化特征
  • 2.2 脂肪细胞凋亡研究进展
  • 2.2.1 与脂肪细胞凋亡相关的基因
  • 2.2.2 与脂肪细胞凋亡相关的因子
  • 2.3 与脂肪细胞凋亡有关的其他影响因素
  • 2.3.1 cAMP 反应元件结合蛋白(CREB)
  • 2.3.2 半乳凝集素(galectins)
  • 2.4 脂肪细胞凋亡与肥胖
  • 2.5 检测细胞凋亡的几种常用方法
  • 2.5.1 形态学检测
  • 2.5.2 DNA 降解的分析
  • 2.5.3 流式细胞术分析(flow cytometry,FCM)
  • 第三章 全反式维甲酸在脂肪细胞中作用的研究进展
  • 3.1 全反式维甲酸的化学结构、体内代谢及其受体的结构
  • 3.1.1 全反式维甲酸的化学结构
  • 3.1.2 全反式维甲酸的体内代谢
  • 3.1.3 维甲酸受体的结构
  • 3.2 ATRA 的作用机理
  • 3.3 ATRA 对脂肪细胞作用的研究概况
  • 3.3.1 ATRA 对前体脂肪细胞分化的影响
  • 3.3.2 ATRA 对ES 细胞向脂肪细胞分化的影响
  • 3.3.3 ATRA 对前体脂肪细胞凋亡的影响
  • 第二部分 实验研究
  • 前言
  • 第四章 全反式维甲酸对猪脂肪细胞增殖的影响
  • 4.1 材料与方法
  • 4.1.1 实验材料
  • 4.1.2 实验方法
  • 4.1.3 统计学分析
  • 4.2 结果与分析
  • 4.2.1 猪脂肪细胞MTT 比色结果
  • 4.2.2 猪脂肪细胞生长曲线
  • 4.3 讨论
  • 第五章 全反式维甲酸对猪脂肪细胞分化的影响
  • 5.1 实验材料与方法
  • 5.1.1 实验材料
  • 5.1.2 实验方法
  • 5.1.3 统计学分析
  • 5.2 结果与分析
  • 5.2.1 前体脂肪细胞分化的形态学观察
  • 5.2.2 油红O 染色提取法检测结果
  • 5.2.3 基因表达
  • 5.3 讨论
  • 第六章 全反式维甲酸对猪前体脂肪细胞凋亡的影响
  • 6.1 材料与方法
  • 6.1.1 实验材料
  • 6.1.2 实验方法
  • 6.1.3 统计学分析
  • 6.2 实验结果与分析
  • 6.2.1 吖啶橙染色结果
  • 6.2.2 流式检测结果
  • 6.2.3 基因表达
  • 6.3 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 作者简介
  • 相关论文文献

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