肿瘤相关蛋白RalB和STARD7对肝癌细胞生物学影响的实验研究

肿瘤相关蛋白RalB和STARD7对肝癌细胞生物学影响的实验研究

论文摘要

肝癌是一种严重威胁人体健康的恶性肿瘤,其发病率在所有恶性肿瘤中据第3位。肝癌在东南亚地区具有较高的发病率,中国广东、台湾两地是肝癌的高发地区。肝癌的发病机制目前仍不是特别清楚,一般认为与病毒侵袭、化学污染物的接触、环境及饮食习惯、遗传易感性及其他方面的因素有关。目前临床对于肝癌的治疗方法以手术治疗为主,配合放疗和化疗,但是由于肝癌诊断较为困难,发现时多为晚期,因此治疗效果并不十分显著。恶性肿瘤的基因诊断与治疗是近年来研究和开发的热点,同时发现一些相对于恶性肿瘤的诊断及治疗靶标,但是由于肝脏器官体积较大、功能复杂,因此迄今为止,还并没有发现针对于肝癌的诊断及治疗靶标。RalB是小G蛋白Ral(Ras like)家族的成员之一,Ral家族由RalA和RalB组成。Ral是Ras超家族的一个成员,具有参与介导许多不同细胞外信号活化的潜能。Ral蛋白与Ras具有55%的氨基酸同源性,其作为辅助因子并活化,从而参与肿瘤基因Ras诱导的细胞转化,Ral通过相应的信号通路和不同的效应因子,引起基因转录的改变从而影响细胞形态的改变,进而影响细胞的转化。小G蛋白Ral家族参与肿瘤的发生、侵袭和转移,但对于Ral家族成员RalA和RalB的各自生物学功能并未完全研究清楚。RalB对于维持肿瘤细胞的存活具有特异性的作用,RalB还能够抑制不同肿瘤细胞的程序性死亡,RalA的生物学功能主要在于促进不同的肿瘤细胞锚定非依赖性增殖,推测RalA和RalB可能具有协同参与肿瘤转化、介导肿瘤细胞增殖和存活信号。同时,RalB能够增强肿瘤细胞的活力,据有促进不同肿瘤细胞迁移的生物学作用。SATRD7是一编码295个氨基酸残基,分子量为34.7kDa的新型蛋白质,其生物学功能至今未明。通过生物信息学分析,发现其全长序列中含有一个类固醇敏感性调节蛋白(StAR)相关脂类转运体结构域(START)。START涉及脂类结合介导的细胞信号转导、脂类转运和调节。START发生突变或错误表达与基因错配、自身免疫性疾病以及肿瘤相关。对于SATRD7的研究,目前限于对其在mRNA水平上的研究。研究发现SATRD7在绒毛膜癌细胞,结肠直肠癌细胞和肝癌细胞中高表达。通过计算机的同源性检测发现推断的蛋白质与磷酸卵磷酯转移蛋白(PCTP)具有同源性,提示SATRD7参与磷脂介导的肿瘤信号活动。目前虽然对于RalB和SATRD7通过相应的实验研究,对其生物学功能有了一定方面的了解,但是相对RalB和SATRD7在肝癌方面的研究并未见相应的报道,因此,我们设计了一系列的实验,通过RalB和SATRD7对肝癌细胞生物学特性,如肿瘤细胞的增殖、存活、侵袭和转移的影响的研究,对于RalB和SATRD7的功能有进一步的了解,从而为未来将其作为肿瘤生物治疗靶标的可能性提供理论依据。方法:首先,采用Western-blot技术对RalB和STARD7在不同的肝癌细胞和其他肿瘤细胞表达进行鉴定。同时,采用免疫组织化学技术、免疫细胞化学技术对RalB和STARD7分别进行组织和亚细胞定位。对于RalB和STARD7分别采用肝组织细胞器分离技术和激光共聚焦技术进一步鉴定其在组织和细胞中的定位。其次,采用RT-PCR技术从293T细胞中扩增出RalB和STARD7目的基因。将目的基因通过转化连接到pMD18-T载体上,提取含有目的基因的质粒,经PCR、双酶切、测序鉴定后,将经双酶切的目的基因与真核载体pcDNA3.1(-)和pDsRed1-C3连接,经转化得到含有RalB和STARD7目的基因的重组质粒,后经双酶切重组质粒,测序正确后将pcDNA3.1(-)/RalB转染至SMMC7721细胞,将pcDNA3.1(-)/STARD7转染至HepG2细胞,并将转染后的细胞采用G418筛选出稳定表达株,用于进一步的实验。再次,采用MTT法分别检测稳定转染pcDNA3.1(-)/RalB、转染pcDNA3.1(-)空载体的SMMC7721的细胞,转染pcDNA3.1(-)/STARD7、转染pcDNA3.1(-)空载体的HepG2细胞的生长状态;通过饥饿实验分析高表达RalB对于肿瘤细胞存活状态的影响;通过流式细胞仪分析分析高表达RalB对肿瘤细胞凋亡的影响;通过Transwell方法检测高表达RalB对促进肝癌细胞侵袭转移能力的影响;最后,通过凝胶迁移实验分析高表达RalB对NF-κB的激活能力,以及从mRNA水平检测转染RalB基因对于细胞周期蛋白B1、D1、E1、E2以及基质金属蛋白酶MMP2表达变化的影响,从而初步探讨RalB对于肝癌细胞生长及转移的作用机制的影响。结果:1.通过Western-blot技术检测了RalB和STARD7在Chang、Bel7402、QGY7703、SMMC7721和HepG2细胞中的表达,结果显示同正常肝细胞Chang比较,RalB在Bel7402和SMMC7721中表达增高,其中在SMMC7721中增高明显,而在QGY7703和HepG2中表达并不明显;STARD7在Bel7402、QGY7703和HepG2中表达增高,在SMMC7721中不表达。同时检测了RalB在其他肿瘤细胞中的表达,发现RalB在不同肿瘤细胞中有不同程度的高表达。2.通过免疫组织化学实验检测了RalB和STARD7在人肝癌组织中的表达,结果表明同正常肝组织相比,RalB在肝癌组织的细胞膜上表达,同时在细胞核中有散在的表达;STARD7主要在肝癌组织的胞浆中表达。通过免疫细胞化学技术和肝组织细胞器分离技术,显示RalB主要在细胞膜和细胞核中表达。免疫细胞化学技术和激光共聚焦显示STARD7在细胞浆中表达,并在核内有散在的表达。3.成功构建真核表达载体pcDNA3.1(-)/RalB、pcDNA3.1(-)/STARD7,以及带有红色荧光标记的融合表达真核表达载体pDsRed1-C3/RalB,pDsRed1-C3/STARD7。4.用脂质体转染法将重组质粒pcDNA3.1(-)/RalB转染至肝癌细胞SMMC7721;将重组质粒pcDNA3.1(-)/STARD7转染至肝癌细胞HepG2。采用RT-PCR及Western—Blot法检测,经G418筛选获得的稳定转染细胞,分别从mRNA及蛋白水平鉴定,同对照组比较,结果表明转染细胞中RalB和STARD7的表达量增高,提示成功构建稳定表达RalB和STARD7的细胞株。5.用同样方法将pDsRed1-C3/RalB和pDsRed1-C3/STARD7真核表达质粒转染入293T和肾癌786-0细胞,通过观察发现RalB集中表达于细胞核和细胞膜;STARD7则定位于胞浆中。6.采用MTT法检测pcDNA3.1(-)/RalB稳定转染的SMMC7721细胞,同转染pcDNA3.1(-)空载体的SMMC7721细胞的生长特性比较;pcDNA3.1(-)/STARD7稳定转染的HepG2细胞,同转染pcDNA3.1(-)空载体的HepG2细胞的生长特性比较,结果表明RalB的过表达能在细胞生长的早期促进肝癌细胞的增殖,而过表达STARD7对于肝癌细胞的生长并无明显的促进作用。7.Transwell实验显示同转染pcDNA3.1(-)空载体的SMMC7721细胞相比,过表达RalB的SMMC7721细胞的侵袭转移水平有较为明显增高,RalB可增强肝癌细胞的侵袭转移能力。8.采用无血清培养收集原点、24h、36h、48h的pcDNA3.1(-)/RalB的SMMC7721细胞,经流式细胞仪分析结果发现,同pcDNA3.1(-)空载体的SMMC7721细胞比较发现,过表达RalB可抑制SMMC7721细胞的凋亡;同时,用抗RalB的单克隆抗体,通过Western—Blot法检测无血清和正常血清培养的肝癌细胞中RalB的表达,发现无血清培养的肝癌细胞中RalB的表达明显高于正常血清培养的肝癌细胞,提示RalB可以抑制肝癌细胞的凋亡,维持肝癌细胞的存活。9.凝胶迁移实验观察到转染RalB基因的SMMC7721细胞核蛋白出现了特异的迁移带,说明RalB能够在肝癌细胞中活化NF—κB,从而产生对于肝癌细胞的生物学作用。10.通过RT-PCR检测,发现转染RalB基因的SMMC7721细胞中的MMP2同pcDNA3.1(-)空载体比较,表达水平升高。提示RalB基因对肝癌细胞转移特性的影响可能与通过促进MMP2的表达有关。结论:过表达RalB可促进SMMC7721肝癌细胞的早期增殖、促进肝癌细胞的侵袭转移、抑制肝癌细胞的凋亡、维持肝癌细胞的存活,实验显示RalB可能是通过激活NF—κB,从而调节MMP2的表达,以此促进肝癌细胞的转移。SATRD7基因对于肝癌细胞HepG2无明显的增殖作用,需进一步进行实验研究。

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 前言
  • 第一章 RalB在多种哺乳动物细胞和肝癌组织中的表达情况
  • 1.1 引言
  • 1.2 实验材料
  • 1.2.1 主要试剂
  • 1.2.2 细胞
  • 1.2.3 培养基和溶液
  • 1.2.4 主要仪器设备
  • 1.3 技术路线
  • 1.4 实验方法
  • 1.4.1 肝癌及其他肿瘤细胞的培养
  • 1.4.2 Western-blot鉴定RalB的表达
  • 1.4.3 免疫组化鉴定RalB的表达
  • 1.4.4 免疫细胞化学鉴定RalB的定位
  • 1.4.5 肝细胞器分离鉴定RalB的定位
  • 1.4.6 统计方法
  • 1.5 结果
  • 1.5.1 RalB在肝癌细胞中的表达
  • 1.5.2 RalB在多种肿瘤细胞中的表达
  • 1.5.3 RalB在肝癌组织的定位
  • 1.5.4 RalB在肝癌细胞中的定位
  • 1.5.5 RalB在肝脏细胞器中的定位
  • 1.6 讨论
  • 1.7 小结
  • 1.8 参考文献
  • 第二章 RalB真核表达载体的构建和鉴定,RalB稳定转染细胞系的构建和鉴定
  • 2.1 引言
  • 2.2 实验材料
  • 2.2.1 主要试剂
  • 2.2.2 质粒、菌株、细胞和引物
  • 2.2.3 培养基和溶液
  • 2.2.4 主要仪器设备
  • 2.3 技术路线
  • 2.4 实验方法
  • 2.4.1 RalB基因的克隆
  • 2.4.2 pcDNA3.1(-)和pDsRed-C3/RalB真核表达载体的构建
  • 2.4.3 RalB导入肝癌细胞
  • 2.4.4 稳定转染细胞系的筛选培养
  • 2.4.5 稳定转染细胞系的鉴定
  • 2.4.6 统计方法
  • 2.5 结果
  • 2.5.1 RalB目的基因的PCR产物鉴定
  • 2.5.2 pcDNA3.1(-)/RalB真核表达载体的构建
  • 2.5.3 RalB稳定表达株的鉴定
  • 1-C3/RalB在293T和肾癌786-0细胞中的定位'>2.5.4 pDsRed1-C3/RalB在293T和肾癌786-0细胞中的定位
  • 2.6 讨论
  • 2.7 小结
  • 2.8 参考文献
  • 第三章 高表达RalB对肝癌细胞SMMC7721生长活动的影响
  • 3.1 引言
  • 3.2 试验材料
  • 3.2.1 主要试剂
  • 3.2.2 细胞
  • 3.2.3 培养基和溶液
  • 3.2.4 主要仪器设备
  • 3.3 技术路线
  • 3.4 实验方法
  • 3.4.1 MTT法鉴定转染RalB细胞的增殖情况
  • 3.4.2 高表达RalB对细胞周期蛋白的影响
  • 3.4.3 饥饿实验对RalB表达的影响
  • 3.4.4 高表达RalB对于凋亡的影响
  • 3.4.5 高表达RalB对于SMMC7721细胞侵袭转移的影响
  • 3.4.6 统计方法
  • 3.5 结果
  • 3.5.1 高表达RalB对肝癌细胞增殖的影响
  • 3.5.2 高表达RalB对周期蛋白mRNA水平的影响
  • 3.5.3 RalB在饥饿实验中的表达
  • 3.5.4 高表达RalB能抵抗饥饿诱导的凋亡
  • 3.5.5 高表达RalB促进SMMC7721细胞的侵袭转移
  • 3.6 讨论
  • 3.7 小结
  • 3.8 参考文献
  • 第四章 高表达RalB促进NF-kB转录活性促进肝癌细胞的侵袭和转移
  • 4.1 前言
  • 4.2 实验材料
  • 4.2.1 主要试剂
  • 4.2.2 细胞
  • 4.2.3 溶液
  • 4.2.4 主要仪器设备
  • 4.3 技术路线
  • 4.4 实验方法
  • 4.4.1 转染细胞核蛋白的提取
  • 4.4.2 凝胶迁移实验
  • 4.4.3 高表达RalB对于MMP2的影响
  • 4.4.4 统计方法
  • 4.5 结果
  • 4.5.1 高表达RalB与NF-κB转录活性的活化
  • 4.5.2 高表达RalB对于MMP2 mRNA水平的影响
  • 4.6 讨论
  • 4.7 小结
  • 4.8 参考文献
  • 第五章 STARD7在肝癌细胞中的表达及在肝癌组织中的定位
  • 5.1 引言
  • 5.2 实验材料
  • 5.2.1 主要试剂
  • 5.2.2 细胞
  • 5.2.3 培养基和溶液
  • 5.2.4 主要仪器设备
  • 5.3 技术路线
  • 5.4 实验方法
  • 5.4.1 肝癌细胞的培养
  • 5.4.2 Western-blot鉴定STARD7的表达
  • 5.4.3 免疫组化鉴定STARD7的表达
  • 5.4.4 免疫细胞化学和激光共聚焦技术鉴定STARD7的定位
  • 5.4.5 数据处理及统计方法
  • 5.5 结果
  • 5.5.1 STARD7在肝癌细胞中的表达
  • 5.5.2 STARD7在肝癌组织的中的定位
  • 5.5.3 STARD7在哺乳动物细胞中的定位
  • 5.6 讨论
  • 5.7 小结
  • 5.8 参考文献
  • 第六章 STARD7真核表达载体的构建和鉴定,STARD7稳定转染细胞系的构建和鉴定以及高表达STARD7对肝癌细胞HepG2生长状况的影响
  • 6.1 引言
  • 6.2 实验材料
  • 6.2.1 主要试剂
  • 6.2.2 细胞、菌株、质粒和引物
  • 6.2.3 培养基和溶液
  • 6.2.4 主要仪器设备
  • 6.3 技术路线
  • 6.4 实验方法
  • 6.4.1 STARD7基因的克隆
  • 6.4.2 pcDNA3.1(-)和pDsRed-C3/STARD7真核表达载体的构建
  • 6.4.3 STARD7导入肝癌细胞HepG2
  • 6.4.4 稳定转染细胞系的筛选培养
  • 6.4.5 稳定转染细胞系的鉴定
  • 6.4.6 MTT法测定转染细胞的增殖情况并绘制细胞生长曲线
  • 6.4.7 统计方法
  • 6.5 结果
  • 6.5.1 STARD7目的基因的PCR产物鉴定
  • 6.5.2 pcDNA3.1(-)/STARD7真核表达载体的构建
  • 6.5.3 STARD7稳定表达株的鉴定
  • 6.5.4 pDsRed1-C3/STARD7在肾癌786-0细胞中的定位
  • 6.5.5 高表达STARD7对肝癌细胞增殖的影响结果
  • 6.6 讨论
  • 6.7 小结
  • 6.8 参考文献
  • 全文小结
  • 英文缩略词表
  • 攻读博士学位期间发表的论文
  • 致谢
  • 相关论文文献

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