论文摘要
启动子是基因表达调控的重要顺式元件,也是基因工程表达载体的一个重要元件。启动子的克隆对于构建基于工程载体,表达目的蛋白有着重要的意义。本论文中,为了研究原核启动子结构与功能。以pSV-β-galactosidase质粒为骨架,通过定点突变的方法引入一个新的BstBI单酶切位点,构建了能在大肠杆菌(Escherichia coli)中正常复制及表达的pSVB启动子探针载体。嗜酸氧化亚铁硫杆菌(Acidithiobacillus ferrooxidans)中由cycA2,sdrA2,petA282C2等基因组成的petⅡ操纵子编码一个电子传递bcl复合体,位于cycA2基因编码区上游序列具有启动子结构特征。本文利用PCR的方法将A.ferrooxidans菌cycA2基因上游DNA片段克隆至pSVB启动子探针载体β-半乳糖苷酶基因上游,替代其原有的启动子(gpt启动子),得到重组质粒pAP2。将质粒导入大肠杆菌(Escherichia coli)进行表达,通过检测β-半乳糖苷酶活性,来鉴定启动子活性强弱。酶活性分析表明,A.ferrooxidans菌cycA2基因上游DNA片段具有显著的启动子活性,同时也说明此启动子探针载体可以用于克隆并鉴定源自A.ferrooxidans菌的重要功能基因的潜在启动子区。进一步对petⅡ启动子区序列分析发现,在其cycA2基因编码区上游-95bp~-90bp处(序列为“TTGATA”)和-59bp~-54bp(序列为“TATGCT”)处存在两个符合原核生物启动子核心元件特征的位点,即类似-35区和-10区的序列。采用定点突变技术,在-95bp~-90bp处将其第一个碱基由“T”突变为“G”,结果导致启动子活性骤降至野生型的15%左右;而将-59bp~-54bp序列第一个碱基由“T”突变为“C”,则使启动子活性降至野生型的59%。上述结果表明:这两个区域是petⅡ启动子的关键位点,确定为启动子的-35区和-10区。
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