论文摘要
人参皂苷-α-鼠李糖苷酶能专—性的水解人参皂苷上的鼠李糖基,使人参皂苷Re转化为人参皂苷Rg1。本文主要针对微生物Absidia sp.G3g产人参皂苷-α-鼠李糖苷酶的基因克隆进行了研究。比较几种提取总RNA的方法后,建立了适合微生物Absidia sp.G3g的RNA提取方法,即改进TakaRaRNAisoReagent试剂盒的方法。提取到的RNA完整性很好,在琼脂糖凝胶图片上,可以清楚的看见5S、18S和28S亚基。根据测得的人参皂苷-α-鼠李糖苷酶蛋白N端序列设计引物,使用RT-PCR的方法扩增出CDS区的基因部分序列。再根据测定的CDS区的基因部分序列设计引物,使用RACE的方法扩增出微生物Absidia sp.G3g产人参皂苷-α-鼠李糖苷酶的基因的全序列。调取微生物Absidia sp.G3g产人参皂苷-α-鼠李糖苷酶的完整CDS区基因,产物纯化后pMD19-T载体连接,转化大肠杆菌JM109感受态细胞。酶切鉴定结果表明目的片段克隆成功。对基因的核酸序列进行了测定,在NCBI中对序列结果进行了同源性比较,发现它与目前已知的鼠李糖苷酶基因无同源性。
论文目录
摘要Abstract第一章 文献综述1.1 人参皂苷概述1.1.1 人参皂苷的化学结构1.1.2 人参皂苷的理化性质1.1.3 人参皂苷的药理作用1.1.4 人参皂苷结构改造1.2 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶1.2.1 在酶学方面的研究1.2.2 在分子生物学方面的研究1.3 研究人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因的分子生物学方法1.3.1 RNA的提取1.3.2 使用PCR技术扩增基因1.3.2.1 RT-PCR技术1.3.2.2 RACE技术扩增未知基因末端1.3.3 克隆技术1.3.4 序列的测定与分析1.4 本论文的主要研究内容第二章 材料与方法2.1 实验材料与工具2.1.1 菌株与载体2.1.2 培养基2.1.3 实验仪器与设备2.1.4 主要试剂2.2 实验方法2.2.1 液体发酵培养基成分的制备2.2.1.1 麸皮浸出液的制备2.2.1.2 人参浸出液的制备2.2.2 菌株液体发酵条件确定2.2.2.1 培养基中诱导物浓度的确定2.2.2.2 发酵时间的确定2.2.3 发酵产酶活性检测2.2.3.1 接菌与培养2.2.3.2 酶液提取与酶反应2.2.3.3 酶活力检测2.2.4 菌体收集2.2.5 RNA的提取方法确定2.2.5.1 LiCl法2.2.5.2 异硫氰酸胍法2.2.5.3 RNAiso Reagent改进法2.2.6 RNA的质量的检测2.2.6.1 吸光值检测2.2.6.2 琼脂糖凝胶电泳检测2.2.7 RNA的DNA Rase处理与精制2.2.7.1 RNA的DNA Rase消化反应2.2.7.2 RNA的精制2.2.8 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因全序列调取2.2.8.1 CDS区基因部分序列的扩增2.2.8.2 CDS区基因部分序列产物回收2.2.8.3 使用RACE技术扩增基因3'和5'端的序列2.2.9 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因全序列的拼接与比对2.2.10 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶CDS区基因的克隆2.2.10.1 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因CDS区基因的获取2.2.10.2 PCR产物和载体的连接2.2.10.3 转化及重组子的筛选2.2.10.4 重组质粒的提取2.2.10.5 重组质粒DNA酶切检测2.2.10.6 序列分析第三章 结果与讨论3.1 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶液体发酵条件的研究3.1.1 液体发酵培养基最佳诱导物浓度的确定3.1.2 发酵时间的研究3.2 总RNA的提取3.2.1 RNA提取方法的确定3.2.1.1 LiCl法提取RNA结果检测3.2.1.2 异硫氰酸胍法提取RNA结果检测3.2.1.3 RNAiso Reagent试剂盒改进法提取RNA结果检测3.2.2 RNA的纯化3.2.3 RNA的纯度和完整性的检测3.2.3.1 吸光值检测3.2.3.2 琼脂糖凝胶电泳检测3.3 基因序列的调取3.3.1 CDS区基因部分序列的调取3.3.1.1 引物的设计3.3.1.2 引物的合成3.3.1.3 扩增人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因3.3.2 基因全序列的扩增3.3.2.1 3'RACE产物检测3.3.2.2 5’RACE产物检测3.3.2.3 基因全长序列拼接和基因同源性比对3.4 人参皂苷-α-鼠李糖苷酶基因CDS区扩增和克隆3.4.1 引物设计3.4.2 CDS区基因调取3.4.3 基因片段上“A”处理3.4.4 将目的片段与载体连接3.4.5 重组质粒PCR检测3.4.6 提取质粒检测3.4.7 重组质粒的酶切鉴定3.4.8 克隆后质粒的测序与分析第四章 结论参考文献致谢附录A附录B
相关论文文献
标签:人参皂苷鼠李糖苷酶论文; 提取论文; 克隆论文;