论文摘要
目的:1.体外培养人肝肿瘤细胞HepG2细胞系,通过倒置显微镜观察细胞形态变化。2.研究胰高血糖素样肽-1(glucagon-like peptide-1, GLP-1)对HepG2细胞糖异生的作用及机制-PI3K通路。3.为GLP-1有效的降糖和改善肝胰岛素抵抗等临床治疗提供初步的理论依据。方法:1.体外培养人肝肿瘤细胞-HepG2细胞,通过倒置显微镜形态学观察。2.将培养的HepG2细胞随机分为4组:Control组,GLP-1 (10nmol/L)组,Insulin (10nmol/L)组,Exenatide (10nmol/L)组,除Control组外,其它三组分别干预4、8、24小时。Western blot方法测糖异生关键酶葡萄糖-6-磷酸酶(glucose-6-phosphatase, G6Pase)的蛋白表达,选出合适的干预时间。3.将培养的HepG2细胞随机分为9组:①Control组,②Insulin(10nmol/L)组,③GLP-1(10nmol/L)组,④Exenatide(10nmol/L)组,⑤LY294002(15μmol/L)组,⑥GLP-1 (10nmol/L)+Insulin(10nmol/L)组,⑦Exenatide(10nmol/L)+Insulin(10nmol/L)组,⑧GLP-1(10nmol/L)+LY294002(15μmol/L)组,⑨xenatide (10nmol/L)+LY 294002 (15μmol/L)组。干预一定时间后(时间待定),用蛋白质印迹(western blot)法测定各组G6Pase的蛋白表达。4.将培养的HepG2细胞随机分为3组:①Control组(5.6mmol/L葡萄糖),②10mmol/L葡萄糖组,③20mmol/L葡萄糖组。干预一定时间后(时间待定),western blot法测定各组G6Pase的蛋白表达。观察葡萄糖对G6Pase的影响。结果:1.HepG2肝细胞传代培养情况良好。2.western blot结果表明:与Control组比,GLP-1组、Insulin组、Exenatide组G6Pase的蛋白表达量较低,干预8小时后降低最明显,所以下一步实验干预时间选择8小时。3.(1)与Control组比,Insulin、GLP-1、Exenatide均能降低HepG2肝细胞G6Pase的蛋白表达量(P<0.05),表明Insuln、GLP-1、Exenatide都能抑制肝糖异生。(2)与Insulin组比,GLP-1-Insulin组和Exenatide+Insulin组G6Pase的蛋白表达量少(P<0.05)。说明GLP-1、Exenatide对G6Pase的抑制与Insulin有叠加作用,GLP-1、Exenatide调节肝糖异生代谢的通路可能与胰岛素不完全一致。(3)与GLP-1组比,GLP-1+LY294002组G6Pase的蛋白表达量增加(P<0.05);与Exenatide组比,Exenatide+LY294002组G6Pase的蛋白表达量增加(p<0.05),说明PI3K通路介导了GLP-1、Exenatide对肝糖异生的调节。4.与5.6mmol/L葡萄糖组比,10mmol/L葡萄糖组G6Pase的蛋白表达量无明显变化,20mmol/L葡萄糖组G6Pase的蛋白表达量明显增加(P<0.05)。说明高糖可以促进肝细胞的糖异生或糖原分解作用。结论:本研究通过体外试验验证了GLP-1、Exenatide可直接作用于人肝细胞,调节肝糖异生代谢。试验结果也证实了GLP-1、Exenatide通过减少肝细胞G6Pase的合成,抑制非糖物质转化为糖,减少糖异生。在GLP-1、Exenatide干预的同时给予PI3K阻断剂LY294002后,人肝细胞G6Pase的表达量下降,肝糖异生作用受抑制。由此可知,GLP-1、Exenatide抑制人肝细胞糖异生的作用可能部分通过激活PI3K通路,增加FoxO1 (forkheadbox,Fox)因子(FoxO1因子可以抑制G6Pase基因表达)的表达从而下调G6Pase的基因表达,而使G6Pase蛋白合成减少。高浓度葡萄糖增加G6Pase蛋白表达,使糖异生增加。
论文目录
相关论文文献
- [1].肝糖异生的调控机制及降糖药物的干预作用[J]. 医学综述 2020(18)
- [2].肝脏糖异生的调控[J]. 中国细胞生物学学报 2019(07)
- [3].基于肝糖异生的降血糖药物研发进展[J]. 药学进展 2017(10)
- [4].肝脏糖异生的分子机制研究进展[J]. 世界华人消化杂志 2008(32)
- [5].父代应激调控子代肝脏糖异生[J]. 科学新闻 2017(04)
- [6].肠道糖异生在能量和糖内稳态控制中的关键作用[J]. 肠外与肠内营养 2011(01)
- [7].反刍动物肝脏糖异生及营养调控[J]. 动物营养学报 2019(10)
- [8].14-3-3β蛋白介导胰高血糖素作用下糖异生的特点及机制[J]. 医学研究杂志 2017(03)
- [9].能量摄入水平对奶牛肝糖异生速率调控的研究进展[J]. 养殖技术顾问 2012(04)
- [10].肠内营养对肝癌术后小肠糖异生影响的研究[J]. 华中科技大学学报(医学版) 2008(06)
- [11].高原环境对大鼠肝脏糖异生的影响[J]. 临床肝胆病杂志 2015(09)
- [12].宫内发育迟缓对大鼠肝糖异生关键酶的影响[J]. 中南大学学报(医学版) 2014(04)
- [13].5-羟色胺前体物对围产期母羊肝脏糖异生关键基因mRNA和蛋白质表达量的影响[J]. 动物营养学报 2019(11)
- [14].一种新的转录因子TORC2在脂联素抑制肝糖异生过程中的作用及机制研究[J]. 临床血液学杂志(输血与检验) 2016(04)
- [15].《肝脏病学杂志》:研究发现肝脏p38a对糖异生的调节机制[J]. 现代生物医学进展 2015(09)
- [16].组学技术分析肉鸡胚胎发育过程中肝脏蛋白表达的变化[J]. 畜牧兽医学报 2020(02)
- [17].氧化应激影响肝癌细胞糖异生关键基因表达的作用[J]. 赣南医学院学报 2019(05)
- [18].小檗碱抑制NF-κB p65改善肝脏糖异生的作用研究[J]. 中华中医药杂志 2019(05)
- [19].健脾清化方对2型糖尿病大鼠肝脏糖异生的影响[J]. 上海中医药大学学报 2018(04)
- [20].黄芪散有效部位群对Ⅱ型糖尿病大鼠肝糖原及糖异生酶的影响[J]. 中药新药与临床药理 2018(01)
- [21].JAZF1过表达对糖异生及胰岛素信号通路的影响[J]. 重庆医科大学学报 2015(07)
- [22].十二指肠空肠旁路术对非肥胖2型糖尿病大鼠小肠糖异生相关基因表达的影响[J]. 江苏医药 2013(15)
- [23].黄秋葵醇提物中2种成分对肝细胞糖异生及AMPKα磷酸化的影响[J]. 中成药 2018(05)
- [24].嗅觉受体OLFR734作为激素Asprosin的受体调控糖代谢[J]. 科学新闻 2020(02)
- [25].果糖-1,6-二磷酸酶及其抑制剂的研究进展[J]. 药学学报 2018(09)
- [26].早期断奶对仔猪糖原含量以及肝脏糖异生和糖酵解相关基因表达的影响[J]. 动物营养学报 2018(03)
- [27].脂质诱导的p62~(dok)高表达增加肝葡萄糖异生[J]. 中国病理生理杂志 2012(09)
- [28].能量代谢与疾病的关键调控因子PGC-1α(下)[J]. 中国糖尿病杂志 2008(08)
- [29].瘦素调节糖代谢的机制研究进展[J]. 中国糖尿病杂志 2016(11)
- [30].短期饲喂二甲酸钾对断奶仔猪生长及其相关功能基因表达的影响[J]. 畜牧与兽医 2015(04)