论文摘要
青霉素G酰化酶(penicillin G acylase,EC 3.5.1.11,简称PGA)可以催化青霉素G水解生成6-氨基青霉素烷酸(6-APA),6-APA是生产半合成青霉素的重要中间体。因此,PGA具有重要的工业价值。本文根据GenBank中已有的巨大芽孢杆菌PGA基因序列设计了上下游引物,通过PCR扩增出巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium)1.1741中PGA基因。将所得的PGA基因克隆至T71ac启动子控制下的表达载体pYES2(amp+,ura+)中,构建了表达质粒pYES2-PGA,并转化进酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)H158中表达,得到4株重组菌株Y1、Y2、Y3、Y4。在不需要苯乙酸诱导的发酵培养中,均在培养液中测到了青霉素酰化酶活性,其中Y4的酶活最高,达到0.75 U/ml。如果再进行发酵培养等优化,还有提高酶活量的潜力。将pYES2-PGA进行测序,并将测序结果与GenBank中已有其它三株巨大芽孢杆菌的PGA基因序列比对,表现出很高的同源性,分别达到97.1%、99.8%和99.8%。固定青霉素酰化酶在工业生产半合成抗生素中具有重要作用,本实验还采用包埋法将无机磁性粒子Fe3O4与有机材料海藻酸钠结合起来形成的一种复合磁性微胶囊,表面含有特征性功能基团。从而有效提高固定化青霉素酰化酶的稳定性和回收率。通过对青霉素酰化酶的固定化研究,优化了固定化参数:给酶量为333.3 U/g(干载体),反应时间为4h,pH为7.5,反应温度37℃。在此条件下固定化酶活性为173.6 u/g(干载体),固定化效率为74.95%,活性回收率为52.08%,水解反应的最适pH为7.5,最适温度为40℃,且固定化酶的储存和多次实验操作稳定性良好。除此之外,测定了酶促反应的动力学常数:溶液酶和固定化酶的米氏常数分别为0.245 mol/l和0.421 mol/l。
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摘要Abstract1 绪论1.1 青霉素酰化酶概述1.1.1 青霉素酰化酶的基因结构和表达调控1.1.2 青霉素酰化酶的结构1.1.3 青霉素酰化酶的作用原理及水解催化机制1.1.4 青霉素酸化酶的应用1.1.5 青霉素酰化酶产生菌菌种的改良1.2 酿酒酵母表达系统1.2.1 酿酒酵母的发展及遗传特性1.2.2 酿酒酵母表达系统的应用及前景1.2.3 pYES2载体1.3 固定化酶研究概述1.3.1 磁性材料的研究现状1.3.2 制备磁性高分子聚合物1.3.3 固定化酶技术的研究现状1.3.4 青霉素酰化酶固定化技术研究现状1.3.5 青霉素酰化酶的固定化方法1.3.6 固定化酶的材料1.4 本研究目的和意义2 PGA基因在酿酒酵母中的表达2.1 材料2.1.1 菌株与质粒2.1.2 培养基2.1.3 抗生素2.1.4 主要用酶2.1.5 Marker2.1.6 主要仪器2.1.7 主要药品及试剂2.2 实验方法2.2.1 巨大芽孢杆菌生长浓度的测定2.2.2 基因组DNA的提取2.2.3 核酸浓度及核酸纯度测定2.2.4 琼脂糖凝胶电泳2.2.5 PCR扩增PGA目的片断2.2.6 目的片段回收(DNA琼脂糖凝胶回收试剂盒)2.2.7 质粒的提取2.2.8 质粒载体和目的片断的制备2.2.9 PGA基因与载体pYES2的连接2.2.10 E.coli DH5a感受态细胞的制备及连接产物的转化2.2.11 重组质粒的提取及酶切鉴定2.2.12 酵母感受态细胞的制备及重组质粒的转化2.2.13 酵母转化子的鉴定2.2.14 重组质粒在酿酒酵母H158中的诱导表达2.2.15 青霉素酰化酶活性测定方法2.3 结果与分析2.3.1 巨大芽孢杆菌1.1741生长浓度的生物量2.3.2 基因组DNA提取2.3.3 核酸浓度和纯度测定2.3.4 PCR产物及胶回收后PGA目的片断检测2.3.5 重组质粒pYES2-PGA的酶切及PCR鉴定2.3.6 重组子诱导表达3 PGA的固定化研究3.1 材料3.2 方法3.2.1 磁性微胶囊的制备3.2.2 磁性微胶囊官能团活化3.2.3 青霉素酰化酶固定化3.2.4 固定化条件筛选3.2.5 游离与固定化青霉素酰化酶的酶学性质3.2.6 米氏常数3.2.7 SEM照片3.2.8 活力回收和相对活力计算公式3.3 结果与分析3O4纳米粒子的光学图片与磁性微胶囊晶体冻干后的SEM照片以及结构模型'>3.3.1 Fe3O4纳米粒子的光学图片与磁性微胶囊晶体冻干后的SEM照片以及结构模型3.3.2 固定化条件筛选结果3.3.3 游离与固定化青霉素酰化酶的酶学性质3.3.4 游离与固定青霉素酰化酶动力学分析3.3.5 活力回收和相对活力结论参考文献附录攻读学位期间发表的学术论文致谢
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