植物激素对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响及裂殖壶菌中脂肪酸提取方法的研究

论文摘要

近年来,不饱和脂肪酸由于对人体具有重要的生理功能而受到科学家们的普遍关注和重视;已有学者研究表明海洋生物裂殖壶菌（Schizochytrium）中DHA含量很高,是工业化生产DHA或者富含DHA的油脂的重要菌种。因此,本论文以裂殖壶菌为研究对象,研究植物激素对裂殖壶菌生长及DHA含量的影响和裂殖壶菌中脂肪酸的提取方法,为裂殖壶菌工业化生产提供科学依据和理论支持。本论文主要获得如下研究结果:（1）在适宜的浓度条件下,6种植物激素都能不同程度提高裂殖壶菌生长速度和DHA含量,但是浓度过高产生抑制作用。6种植物激素对裂殖壶菌生物量和DHA含量的适宜浓度分别是:BA,3mg/L;KT,10mg/L;GA,1mg/L;IBA,3mg/L;NAA,6mg/L;IAA,3mg/L。BA在添加量3mg/L时,裂殖壶菌的生物量和DHA含量分别比对照组提高28.2%和30.0%。（2）裂殖壶菌中脂肪酸提取方法研究结果:超声破壁法提取率高于酶破壁法,超声破壁法中氯仿-甲醇比正己烷能提取出更多的油脂,酶破壁法中溶菌酶的提取率高于蜗牛酶。但是氯仿-甲醇提取由于存在毒性等特点,不宜应用于食品生产中,故正己烷提取较为合适。对发酵液来说,酶法破壁的效率较高,溶菌酶的破壁效率要高于蜗牛酶,在相同剂量、相同条件下,溶菌酶破壁正己烷提取法的提取率更高。虽然湿法（酶法）提取较干法（超声）提取的提取效率低,但是湿法提取能够省去干燥步骤,在工业生产中节省大量成本,同时提高生产效率,具有重要意义。

论文目录

• 摘要
• ABSTRACT
• 第一章 前言
• 1.1 脂肪酸研究概况
• 1.1.1 脂肪酸
• 1.1.2 脂肪酸命名
• 1.1.3 脂肪酸的分类
• 1.1.4 多不饱和脂肪酸概述及分类
• 1.1.5 n-3多不饱和脂肪酸
• 1.1.5.1 n-3多不饱和脂肪酸的生理功能
• 1.1.5.2 n-3多不饱和脂肪酸的合成
• 1.1.5.3 n-3多不饱和脂肪酸的生物资源
• 1.1.5.4 微生物合成n-3多不饱和脂肪酸
• 1.2 海洋真菌裂殖壶菌研究概况
• 1.2.1 裂殖壶菌简述
• 1.2.2 裂殖壶菌抗氧化保护研究
• 1.2.3 裂殖壶菌胞内脂肪酸的提取及微囊化研究
• 1.2.3.1 裂殖壶菌胞内脂肪酸的提取
• 1.2.3.2 油脂微囊化研究
• 1.2.4 裂殖壶菌安全性研究
• 1.2.5 裂殖壶菌饵料效果研究
• 1.3 植物激素研究概况
• 1.3.1 植物激素
• 1.3.2 植物激素的种类
• 1.3.3 植物激素作用机理
• 1.3.4 生长素
• 1.3.4.1 生长素简述
• 1.3.4.2 生长素的合成
• 1.3.4.3 生长素的作用机理
• 1.3.4.4 生长素的生理作用
• 1.3.4.5 生长素的应用
• 1.3.5 细胞分裂素
• 1.3.5.1 细胞分裂素简述
• 1.3.5.2 细胞分裂素的合成
• 1.3.5.3 细胞分裂素的作用机理
• 1.3.5.4 细胞分裂素的生理作用
• 1.3.5.5 细胞分裂素的应用
• 1.3.6 赤霉素
• 1.3.6.1 赤霉素简述
• 1.3.6.2 赤霉素的合成
• 1.3.6.3 赤霉素的作用机理
• 1.3.6.4 赤霉素的生理作用
• 1.3.6.5 赤霉素的应用
• 1.3.7 脱落酸
• 1.3.7.1 脱落酸简述
• 1.3.7.2 脱落酸的合成
• 1.3.7.3 脱落酸作用机理
• 1.3.7.4 脱落酸的生理作用
• 1.3.7.5 脱落酸的应用
• 1.3.8 乙烯
• 1.3.8.1 乙烯简述
• 1.3.8.2 乙烯的合成
• 1.3.8.3 乙烯的作用机理
• 1.3.8.4 乙烯的生理作用
• 1.3.8.5 乙烯的应用
• 1.4 脂肪酸提取研究概况
• 1.4.1 脂肪酸的提取方法
• 1.4.1.1 超声波协助萃取法
• 1.4.1.2 索氏提取法
• 1.4.1.3 微波协助萃取法
• 1.4.1.4 超临界流体萃取法
• 1.4.2 DHA提取
• 1.4.2.1 提取DHA的原料及选择
• 1.4.3 提取DHA的意义
• 第二章 植物激素对裂殖壶菌生长及脂肪酸组成的影响
• 2.1 材料与方法
• 2.1.1 材料
• 2.1.1.1 菌种
• 2.1.1.2 培养基
• 2.1.1.3 主要试剂
• 2.1.2 实验仪器
• 2.1.3 实验方法
• 2.1.3.1 培养方法
• 2.1.3.2 种子液的制备
• 2.1.3.3 生物量的测定
• 2.1.3.4 脂肪酸的甲酯化及气相色谱分析
• 2.1.4 6种植物激素对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.1 6-苄基腺嘌呤（BA）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.2 糠基腺嘌呤（KT）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.3 赤霉素（GA）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.4 吲哚丁酸（IBA）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.5 a-萘乙酸（NAA）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.1.4.6 吲哚乙酸（IAA）对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响
• 2.2 结果与分析
• 2.2.1 6-苄基腺嘌呤（BA）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.2.2 糠基腺嘌呤（KT）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.2.3 赤霉素（GA）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.2.4 吲哚丁酸（IBA）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.2.5 α-萘乙酸（NAA）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.2.6 吲哚乙酸（IAA）对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响
• 2.3 讨论
• 第三章 裂殖壶菌中脂肪酸的提取方法研究
• 3.1 材料与方法
• 3.1.1 裂殖壶菌菌粉制备
• 3.1.1.1 菌种
• 3.1.1.2 培养基
• 3.1.1.3 培养方法
• 3.1.2 实验仪器
• 3.1.3 实验方法
• 3.1.3.1 超声波破壁正己烷提取法
• 3.1.3.2 超声波破壁氯仿甲醇提取法
• 3.1.3.3 酶破壁正己烷提取法
• 3.2 结果与分析
• 3.2.1 超声波破壁正己烷提取法
• 3.2.1.1 提取时间对提取率的影响
• 3.2.1.2 提取次数对提取率的影响
• 3.2.2 超声波破壁氯仿甲醇提取法:
• 3.2.2.1 提取时间对提取率的影响
• 3.2.2.2 提取温度对提取率的影响
• 3.2.3 酶破壁正己烷提取法
• 3.2.3.1 溶菌酶破壁法对提取率的影响
• 3.2.3.2 蜗牛酶破壁法对提取率的影响
• 3.2.4 各种方法比较
• 3.3 讨论
• 结论
• 参考文献
• 致谢
• 攻读学位期间发表的学术论文目录