转基因聚合提高烟草耐盐性的研究

转基因聚合提高烟草耐盐性的研究

论文摘要

盐胁迫是自然界中主要的非生物胁迫之一,目前已经严重影响到世界范围内许多重要作物的产量。利用基因工程技术提高作物耐盐性是解决这一问题的最有效途径之一。目前,通过向植物中转入耐盐相关基因可在一定程度上改善植物的耐盐性。然而,由于植物的耐盐性是受多基因控制的复杂遗传性状,依赖于多个基因之间的相互作用,是多种耐盐生理性状的综合体现,因此,转入单个耐盐相关基因只能部分提高植物的耐盐性。一般认为,将多个耐盐相关基因聚合到同一植物中有可能会大大提高转基因植物抵抗盐胁迫的能力。来源于大肠杆菌的betA基因,编码胆碱脱氢酶,转入植物后可提高细胞甘氨酸甜菜碱含量;来自于盐芥的TsVP基因编码V-H+-PPase,该基因过表达可提高液泡膜逆浓度梯度转运离子的能力;AtNHX1基因编码拟南芥液泡膜Na+/H+反向转运蛋白,该蛋白可将胞质中过高的Na+转运到液泡内积累。已有的基因工程研究表明,分别过量表达这三个单基因都可以明显改善植物的耐盐性。本工作以分别转betA基因烟草(BL)、转TsVP基因烟草(TL)和转AtNHX1基因烟草(AL)为材料,通过有性杂交方法获得聚合有2个不同转基因的烟草植株,即betA×TsVP(BT)、betA×AtNHX1(BA)。PCR、Southern blot、RT-PCR和检测甘氨酸甜菜碱含量、V-H+-PPase水解活性及Na+含量的测定结果都表明,两个转基因稳定存在于转基因聚合的烟草植株中,并进行了活跃表达。通过对转单基因植株和转基因聚合植株在植株和细胞水平上的一系列耐盐性分析,确定了细胞水平与植株水平的耐盐性存在一致性,转基因聚合植株与转单基因植株相比具有较高的耐盐性,但未表现出耐盐程度大幅度提高。主要结果和结论如下:转基因聚合烟草BT(betA×TsVP)的耐盐性分析在加有相同浓度NaCl的培养基上,转基因聚合株系(BT)表现出相对较高的种子萌发率和较好的小苗长势,植株单株鲜重最大;而转单基因株系(分别转betA基因和TsVP基因)次之,未转基因对照最差。表明转基因聚合相比转单基因提高了烟草在种子萌发阶段及小苗生长阶段的耐盐性。在正常的生长条件下,转betA基因植株与未转基因植株的生物量相似;250mM NaCl胁迫处理14天后,转betA基因植株的生物量高于未转基因植株。而无论在正常生长条件下还是盐胁迫处理后,转TsVP基因植株和转基因聚合植株都比未转基因植株生长快,具有旺盛的地上部分和发达的根系,其中转基因聚合植株的生物量最高。在正常生长条件下,转TsVP基因植株和转基因聚合植株的净光合速率显著高于未转基因对照和转betA基因植株的,而TsVP转基因植株和转基因聚合植株之间以及未转基因植株和转betA基因植株之间在光合能力上没有显著差异。250 mM NaCl的胁迫处理导致所有株系植株的光合活性下降,但转基因植株的净光合速率和Fv/Fm都比未转基因植株的高,表明转基因植株的光合效率较高。其它光合作用参数的测定结果也表明转基因植株在盐胁迫条件下比未转基因植株具有更好的光合能力,但转基因聚合植株与转单基因植株相比差异不大。在盐胁迫条件下,转基因植株和未转基因植株叶片内Na+和Cl-含量都有所增加,但含有TsVP基因的烟草植株中积累了更多的Na+和Cl-,Na+和Cl-含量显著高于未转基因植株和转betA基因植株的。转基因聚合植株与转TsVP基因植株相比Na+和Cl-含量差异不显著。利用激光扫描共聚焦显微镜结合Sodium Green荧光指示剂对液泡中Na+的积累进行检测,发现盐胁迫导致所有株系的细胞中荧光强度明显升高,意味着Na+的积累量增加。转TsVP基因细胞和转基因聚合细胞液泡中的Na+积累量显著高于未转基因对照的和转betA基因细胞的,而转基因聚合细胞与转TsVP基因细胞相比,荧光强度无显著差异,说明二者的Na+含量相似。这与盐胁迫后植株叶片中Na+含量的测定结果是相一致的,表明TsVP的表达增加了转基因细胞中Na+在液泡内的积累量。盐分胁迫使膜系统受到伤害,导致不同株系植株的叶片MDA含量和细胞电解质外渗率大幅度升高。未转基因植株的MDA含量和细胞电解质外渗值最大,而转基因聚合植株的最小,并且与转单基因植株间存在不同程度的差异,表明未转基因植株细胞受到的伤害最重,而转基因聚合细胞受害程度最小。在细胞学水平上对盐胁迫下细胞活力和线粒体膜完整性的测定结果得出同样的结论,即在相同的胁迫条件下,转基因株系受害程度低,原生质体活力高和线粒体膜完整性好。利用pH敏感的荧光探针BCECF-AM结合激光扫描共聚焦显微镜技术检测了盐胁迫对叶肉细胞质和液泡pH值的影响。在相同浓度的NaCl胁迫下,转基因细胞,尤其是TsVP基因过表达的细胞,pH变化幅度较小,说明其能够更好的维持细胞内环境的相对稳定。根据能斯特方程计算跨液泡膜的质子电势(△Ψ(H+))。在胁迫前和胁迫后,转TsVP基因细胞和转基因聚合细胞中的△Ψ(H+)值都要显著高于未转基因的和转betA基因细胞的。表明在含有外源TsVP基因的细胞中,V-H+-PPase通过水解PPi来酸化液泡,从而维持了细胞中高的跨液泡膜质子电势。高的跨液泡膜电势能够促进Na+在液泡中的区隔化,这与Na+在液泡中积累增加的实验结果相一致。转基因聚合烟草BA(betA×AtNHX1)的耐盐性分析在含有相同盐浓度的培养基上,转基因株系的种子萌发率和小苗生长状态优于未转基因植株的。在相同的盐浓度下,转基因聚合烟草种子(BA)的萌发率最高,其单株鲜重略高于转单基因植株的(分别转betA基因和AtNHX1基因),但差异达不到显著水平。表明在种子萌发和幼苗生长阶段转基因聚合株系的耐盐性略高于转单基因株系的。盐胁迫增加了所有植株中的Na+含量,含有AtNHX1基因的植株叶片中的Na+含量显著高于未转基因植株和转betA基因植株的。Sodium Green标记显示,在盐胁迫条件下液泡内Na+积累量在转AtNHX1基因的烟草细胞中显著高于未转基因细胞和转betA基因细胞的,而转基因聚合细胞与转AtNHX1基因细胞在液泡内Na+积累量上差异不显著。这与叶片Na+含量的测定结果是相一致的,表明在含有AtNHX1基因的细胞中,AtNHX1基因的表达加速了Na+在液泡中的积累。对胞质和液泡pH值及跨液泡膜电势的计算结果也表明转基因细胞维持内环境稳定的能力要高于未转基因细胞的。转基因细胞在盐胁迫条件下表现出较高活力和较好的线粒体膜的完整性,但转基因聚合细胞和转单基因细胞间差异不显著。盐处理使植株叶片的丙二醛含量和离子渗漏率都有所上升,但转基因植株的测定值显著低于未转基因植株。这些结果表明在盐胁迫下转基因细胞与未转基因对照相比具有明显提高的抗逆性,但betA×AtNHX1植株与转单基因植株相比耐盐性提高幅度不大。尽管在转基因聚合植株中,各外源基因分别通过各自的方式对提高植株的耐盐性做出了贡献,但转基因聚合植株的耐盐性与转单基因植株相比提高幅度有限。虽然转基因聚合在一定程度上改善了转单基因植株的耐盐性,但与单基因分别提高植株耐盐程度之和相差很大,有可能植物的耐盐性是多个代谢活动的综合反应,而某些制约环节决定植株对盐胁迫的敏感性。因此,尽管将控制不同代谢途径的耐盐相关基因聚合是提高植物耐盐性的重要途径,但深入了解与不同植株耐盐性相关的代谢活动及其调控机制十分必要,从而拟订出针对性强易于操作的植物抗逆基因工程策略。另外,本工作结果提示,利用突变体来确定某个基因的生物学功能时有可能因调控网络和代谢网络的破坏导致基因功能的放大,因此,在基因功能分析中应注意不同遗传背景下目标基因的功能差异。

论文目录

  • 中文摘要
  • Abstract
  • 符号说明
  • 第一章 前言
  • 1.1 盐胁迫对植物造成的伤害
  • 1.2 植物的耐盐机理
  • 1.2.1 植物对盐胁迫的形态适应
  • 1.2.2 植物耐盐的分子机理
  • 1.3 甘氨酸甜菜碱及其相关的植物基因工程
  • 1.3.1 甜菜碱的生物合成途径
  • 1.3.2 甜菜碱合成的生物基因工程研究
  • 1.3.3 甜菜碱的保护机制
  • 1.4 离子转运及离子平衡的基因工程
  • 1.4.1 质膜和液泡膜质子泵
  • +/H+反向转运蛋白'>1.4.2 质膜和液泡膜Na+/H+反向转运蛋白
  • 1.4.3 离子通道
  • 1.5 耐盐相关基因聚合的研究
  • 1.5.1 实现基因聚合的策略和方法
  • 1.5.2 耐盐相关基因聚合的研究进展
  • 1.6 本论文的目的和意义
  • 第二章 材料与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 植物材料及培养基
  • 2.1.2 烟草植株的有性杂交
  • 2.1.3 烟草种子的萌发及无菌苗的生长
  • 2.2 转基因烟草植株的分子生物学检测
  • 2.2.1 PCR检测
  • 2.2.2 Southern杂交检测
  • 2.2.3 RT-PCR及Real-time RT-PCR检测
  • 2.3 烟草种子和小苗的耐盐性分析
  • 2.3.1 种子萌发率和生长速率的测定
  • 2.3.2 蛭石培养烟草小苗的耐盐性
  • 2.4 盐胁迫条件下烟草植株根系的观察及生物量统计
  • 2.5 光合作用及叶绿素荧光参数的测定
  • 2.6 叶绿素含量的测定
  • 2.7 转基因聚合烟草的耐盐性分析
  • 2.7.1 膜脂过氧化程度的测定
  • 2.7.2 叶片细胞膜损伤的测定
  • 2.7.3 betA基因的表达及甜菜碱含量的测定
  • +-ATPasc和V-H+-PPasc活性的测定'>2.7.4 TsVP基因的表达及V-H+-ATPasc和V-H+-PPasc活性的测定
  • 2.7.5 转基因植株中AtNHX1基因表达强度的检测
  • 2.7.6 离子含量的测定
  • 2.8 转基因烟草耐盐性的细胞学检测
  • 2.8.1 植物材料
  • 2.8.2 烟草叶肉原生质体的游离
  • 2.8.3 盐胁迫条件下原生质体活力的测定
  • 2.8.4 线粒体完整性的测定
  • 2.8.5 烟草细胞胞质和液泡pH的测定
  • 2.8.6 跨液泡膜质子电势差的计算
  • +积累的测定'>2.8.7 烟草细胞液泡中Na+积累的测定
  • 2.8.8 荧光强度的定量计算
  • 2.9 实验数据的统计学分析
  • 第三章 实验结果
  • 3.1 betA和TsVP转基因聚合烟草的耐盐性分析
  • 3.1.1 betA和TsVP转基因聚合烟草的获得
  • 3.1.2 转基因植株中betA基因表达及甜菜碱含量的测定
  • +-ATPase和V-H+-PPasc活性的测定'>3.1.3 TsVP基因的表达及V-H+-ATPase和V-H+-PPasc活性的测定
  • 3.1.4 烟草种子及小苗的耐盐性
  • 3.1.5 盐胁迫下不同烟草植株根系和地上部分形态及生物量
  • 3.1.6 盐胁迫对烟草植株光合作用和叶绿素荧光参数的影响
  • 3.1.7 盐胁迫对叶片叶绿素含量变化的影响
  • 3.1.8 细胞膜伤害程度的测定
  • 3.1.9 烟草叶片中无机离子含量的测定
  • +积累的测定'>3.1.10 盐胁迫诱导的液泡中Na+积累的测定
  • 3.1.11 细胞存活率的测定
  • 3.1.12 NaCl处理对细胞线粒体完整性的影响
  • 3.1.13 不同细胞胞质和液泡pH的测定及跨液泡膜质子电位差的计算
  • 3.2 聚合betA和AtNHX1基因烟草的耐盐性分析
  • 3.2.1 聚合beta和AtNHX1基因烟草的获得
  • 3.2.2 盐胁迫下betA基因表达及甜菜碱含量的变化
  • 3.2.3 盐胁迫对AtNHX1基因表达的影响
  • 3.2.4 转基因聚合(betA×AtNHX1)烟草种子及小苗的耐盐性
  • 3.2.5 不同株系植株的细胞膜受损程度的测定
  • 3.2.6 烟草不同株系叶片中无机离子含量的测定
  • +积累量测定'>3.2.7 盐胁迫下不同株系的液泡Na+积累量测定
  • 3.2.8 不同株系原生质体活力的差异
  • 3.2.9 线粒体完整性的检测
  • 3.2.10 不同株系细胞的胞质和液泡pH测定及跨液泡膜质子电位的计算
  • 第四章 讨论
  • 4.1 转基因聚合提高植物耐盐性的目标与现实
  • 4.2 转betA、TsVP和AtNHX1基因提高烟草植株耐盐性的探讨
  • 4.3 细胞耐盐性与植株耐盐性的对应关系
  • 4.4 转基因聚合植株的耐盐性与转单基因植株的差异
  • 第五章 总结与展望
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻读学位期间发表的学术论文目录
  • 学位论文评阅及答辩情况表
  • 附件
  • 相关论文文献

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