淇河鲫肌肉营养成分分析及生长激素基因cDNA克隆和表达的研究

淇河鲫肌肉营养成分分析及生长激素基因cDNA克隆和表达的研究

论文摘要

淇河鲫(Carassius auratus gibelio var)原产于河南省淇河,以生长快、味道美和效益高等优点而久负盛名,河南省人民政府已正式行文将其列入《河南省重点保护野生动物名录》并以第一名予以公布。为了繁荣市场,丰富人民生活,发展池塘养殖已变得日益迫切,对淇河鲫的生物学特性、生长变化规律等方面的研究已成为重要的课题。而动物的生长和发育受多种因素的调节和控制,包括遗传,营养,环境和内分泌等。在内分泌系统中,生长激素(GH)占据着中心调节作用的位置,它是由脑垂体间叶细胞分泌的一种多肽激素,具有调节生长发育,参与体内代谢调节,增进食欲,提高食物转化率等作用,然而垂体中GH含量极低,分离纯化比较困难,使得GH生理功能的进一步研究和应用受到限制。随着现代生物技术的发展,已有研究表明基因重组的GH与天然的GH一样具有生物活性,基因重组GH应用于研究和生产已经成为可能。因此,我们以淇河鲫作为研究对象,通过含肉率测定、肌肉生化成分分析,对其品质、营养价值作出初步评定,为淇河鲫营养生理的研究提供理论基础;用RT-PCR和RACE技术从淇河鲫垂体总RNA中扩增获得了淇河鲫GH全长cDNA序列,并对核苷酸和氨基酸序列进行了分析,构建了淇河鲫GH基因的原核和真核表达载体,获得了相应的重组基因工程菌,并对基因工程菌进行了诱导表达研究,为下一步开展淇河鲫GH的生物活性检测、转基因鱼研究以及研制开发成为安全、高效的新型调节鱼类生长的基因制剂奠定坚实的基础。主要结果如下:1)淇河鲫肌肉营养成分分析及营养价值评定淇河鲫是含肉率(65.72%)较高的鱼类;肌肉水分、蛋白质、脂肪、灰分含量分别为75.56%、19.39%、2.96%、1.17%;氨基酸分析表明,淇河鲫肌肉氨基酸总量(18.22%)、必需氨基酸量(7.37%)均较高,必需氨基酸占氨基酸总量的百分比(40.45%)和必需氨基酸与非必需氨基酸的比值(0.68)均符合WHO/FAO提出的40%左右和在0.60以上的要求,而且必需氨基酸含量高于婴儿需要量为底限的WHO/FAO评分模式;尤其是赖氨酸含量较丰富,达到鸡蛋蛋白质评分模式标准,较WHO/FAO评分模式高出30.0%,可以认为淇河鲫是一种营养丰富的优质鱼。2)克隆并获得了淇河鲫GH全长cDNA序列淇河鲫GH cDNA序列全长1191 bp,其中含Poly(A) 14 bp, 5’端非编码区长55 bp (含有在真核生物中高度保守的Kozak序列),阅读框长633 bp,3’端非编码区长503bp(含真核生物mRNA前体3’剪切和加poly(A)尾的信号ATTAAA序列),共编码210个氨基酸;编码的蛋白的分子量为23.78 ku。蛋白质结构分析表明淇河鲫GH信号肽为前22个氨基酸,成熟肽为188个氨基酸,成熟肽中有四个半胱氨酸(C),形成两个二硫键,对GH的正常折叠、维持空间结构以发挥有效的生理功能有着重要作用。3)分析并揭示了淇河鲫GH基因结构和脊椎动物进化的关系通过对不同分类地位脊椎动物GH基因的核苷酸序列和氨基酸序列深入分析发现:①GH家族有三个非常保守的区域,以淇河鲫GH氨基酸序号为标准,第28位到第44位、第70位到第111位、第180位到第210位;特别是从第180位到第210位这个区域高度保守,含有的非极性氨基酸达10个(其中3个半胱氨酸),为分子的疏水区,与GH分子的结构及稳定性有关;此外,除去信号肽部分,有30个氨基酸在所比较的动物中完全相同,可以认为这30个氨基酸残基对GH专一性、生物活性及空间构象有重要的作用。②成熟的GH是从一个共同的祖先进化而来,随着生物的进化过程,GH趋异进化成不同物种的GH分子;淇河鲫和鲤形目鱼类GH分歧较早,鲶形目鱼类的GH分歧次之,鲑鳟鱼类的GH分歧较晚,两栖类、禽类和哺乳类动物GH分歧最晚。4)构建了淇河鲫GH基因的原核表达载体并获得了重组蛋白本研究在原核表达载体pQE30上成功插入了淇河鲫GH基因,成功构建获得了pQE30-GH原核表达载体,通过测序验证构建的表达载体结构和序列正确无误。该载体经IPTG诱导后,SDS-PAGE电泳检测在约24 ku处获得了表达产物,经薄层扫描分析重组蛋白表达量较低,占菌体蛋白的6.6%。5)构建了淇河鲫GH基因毕赤酵母真核表达载体pPIC9K-GH,并获得了基因工程菌和重组蛋白。构建了淇河鲫GH基因真核表达载体pPIC9K-GH,该载体经电转化获得了整合有淇河鲫GH基因的重组毕赤酵母基因工程菌,重组菌经甲醇诱导后,成功获得了重组蛋白;表达条件优化试验结果表明,培养液的pH值、甲醇诱导浓度、诱导时间均对重组蛋白的表达有较大影响,其中诱导重组菌表达的适宜甲醇浓度为0.5~0.75%,适宜在弱偏碱性的培养液中表达,表达的最适pH值为7.0~7.5;诱导2天即达到最大表达量。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 鱼类生长激素的研究概况
  • 1.1 淇河鲫简介
  • 1.1.1 分类地位
  • 1.1.2 生物学特性
  • 1.1.3 生态习性
  • 1.2 鱼类 GH 的研究进展
  • 1.2.1 GH 及其家族
  • 1.2.2 GH 的结构
  • 1.2.3 GH 的合成、分泌和释放
  • 1.2.4 GH 的生理功能
  • 1.2.5 GH 的作用机制
  • 1.2.6 GH 基因的分离、克隆、表达与序列分析
  • 1.2.7 GH 的表达调控
  • 1.2.8 GH 的测定方法
  • 1.2.9 外源 GH 引入鱼体的途径和方法研究进展
  • 1.2.10 GH 在水产养殖中的应用
  • 1.3 本文研究的目的和意义
  • 第二章 淇河鲫肌肉营养成分分析及营养价值评定
  • 2.1 试验材料
  • 2.1.1 试验鱼
  • 2.1.2 试剂
  • 2.1.3 器具和仪器
  • 2.2 试验方法
  • 2.2.1 含肉率的测定
  • 2.2.2 生化成分分析
  • 2.3 结果
  • 2.3.1 含肉率
  • 2.3.2 常规营养成分及含量
  • 2.3.3 肌肉中氨基酸的组成及含量
  • 2.4 讨论
  • 2.4.1 淇河鲫和其它鱼类含肉率的比较
  • 2.4.2 淇河鲫和其它鱼类常规营养特性的比较分析
  • 2.5 小结
  • 第三章 淇河鲫生长激素基因CDNA 的克隆与序列分析
  • 3.1 试验材料
  • 3.1.1 克隆质粒和菌株
  • 3.1.2 主要药品和试剂
  • 3.1.3 主要仪器设备
  • 3.1.4 培养基
  • 3.1.5 溶液
  • 3.1.6 试验鱼
  • 3.2 试验方法
  • 3.2.1 引物的设计和合成
  • 3.2.2 淇河鲫垂体总 RNA 的提取和检测
  • 3.2.3 淇河鲫脑垂体总 RNA 的反转录
  • 3.2.4 淇河鲫 GH cDNA 部分片段的扩增
  • 3.2.5 淇河鲫 GH cDNA 3’端(下游区)片段的扩增
  • 3.2.6 淇河鲫 GH cDNA 5’端(上游区)片段的扩增
  • 3.2.7 目的片段的回收纯化
  • 3.2.8 回收后 PCR 产物的连接反应
  • 3.2.9 大肠杆菌感受态细胞的制备及其转化
  • 3.2.10 重组质粒的筛选、克隆及保菌
  • 3.2.11 重组质粒DNA 的少量提取
  • 3.2.12 重组质粒的鉴定
  • 3.2.13 重组质粒DNA 序列测定、DNA 序列分析和氨基酸序列的比较及系统进化树的构建
  • 3.3 结果
  • 3.3.1 淇河鲫垂体总 RNA 的提取
  • 3.3.2 淇河鲫 GH cDNA 部分片段的扩增
  • 3.3.3 淇河鲫 GH cDNA 3’端序列的克隆
  • 3.3.4 淇河鲫 GH cDNA 5’端序列的克隆
  • 3.3.5 淇河鲫 GH cDNA 碱基序列与其它动物的同源性比较
  • 3.3.6 淇河鲫 GH 氨基酸成分分析
  • 3.3.7 不同动物 GH 氨基酸序列的同源性比较分析
  • 3.3.8 鱼类 GH 和其它脊椎动物 GH 的进化分析
  • 3.4 讨论
  • 3.5 小结
  • 第四章 淇河鲫生长激素基因在大肠杆菌中的表达研究
  • 4.1 试验材料
  • 4.1.1 菌株与质粒
  • 4.1.2 主要药品和试剂
  • 4.1.3 主要仪器设备
  • 4.1.4 培养基
  • 4.1.5 常用溶液及缓冲液
  • 4.2 试验方法
  • 4.2.1 构建淇河鲫GH 基因原核表达载体的PCR 引物设计
  • 4.2.2 淇河鲫GH 成熟肽序列的PCR 扩增
  • 4.2.3 低溶点琼脂糖凝胶电泳回收、纯化、PCR 产物连接至pMD19-T 载体、转化及蓝白斑筛选、克隆及保菌
  • 4.2.4 菌落PCR,检测菌落中插入片段的长度
  • 4.2.5 将阳性菌落提取质粒DNA
  • 4.2.6 淇河鲫GH 基因原核表达载体的构建
  • 4.2.7 重组工程菌的诱导表达
  • 4.2.8 SDS-PAGE 电泳检测
  • 4.3 结果
  • 4.3.1 淇河鲫GH 成熟肽PCR 扩增
  • 4.3.2 菌落PCR,检测菌落中插入片段的长度
  • 4.3.3 淇河鲫GH 原核表达质粒PQE30-GH 的构建及检测
  • 4.3.4 重组菌的诱导表达
  • 4.4 讨论
  • 4.5 小结
  • 第五章 淇河鲫生长激素基因在毕赤酵母菌中的表达研究
  • 5.1 试验材料
  • 5.1.1 菌株与质粒
  • 5.1.2 主要药品和试剂
  • 5.1.3 主要仪器设备
  • 5.1.4 储液和培养基
  • 5.2 试验方法
  • 5.2.1 构建淇河鲫GH 基因真核表达载体的PCR 引物设计
  • 5.2.2 淇河鲫GH 成熟肽序列的PCR 扩增
  • 5.2.3 低溶点琼脂糖凝胶电泳回收、纯化、PCR 产物连接至pMD19-T 载体、转化及蓝白斑筛选、克隆及保菌
  • 5.2.4 菌落PCR,检测菌落中插入片段的长度
  • 5.2.5 将阳性菌落提取质粒DNA
  • 5.2.6 表达质粒pPIC9k-GH 的构建
  • 5.2.7 重组毕赤酵母工程菌的制备
  • 5.2.8 重组毕赤酵母工程菌的诱导表达条件筛选
  • 5.2.9 表达产物的纯化和活性检测
  • 5.3 结果
  • 5.3.1 淇河鲫GH 成熟肽PCR 扩增
  • 5.3.2 菌落PCR,检测菌落中插入片段的长度
  • 5.3.3 淇河鲫GH 基因真核表达载体构建
  • 5.3.4 重组毕赤酵母工程菌的诱导表达
  • 5.4 讨论
  • 5.5 小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 附表
  • 附图
  • 致谢
  • 个人简介
  • 相关论文文献

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