环孢素固体分散体胶囊的研制及载体促吸收机理的研究

环孢素固体分散体胶囊的研制及载体促吸收机理的研究

论文摘要

环孢素(cyclosporine A,CyA)是由11个亲脂性氨基酸组成的中性环状多肽,20世纪80年代以来被广泛地应用于临床器官移植,用以提高移植后的存活率,已经成为当前最主要的免疫抑制剂之一。CyA因在水中几乎不溶并受到肠道及肝脏中的代谢酶细胞色素P4503A4(CYP3A4)的代谢和肠道外向转运载体蛋白P-糖蛋白(P-gp)的外排作用,而使口服生物利用度较低(20%-50%)。本文研制CyA固体分散体,并探讨载体对CYP3A活性和P-gp外排作用,以期通过提高CyA溶解度和溶出速度、载体对CYP3A活性和P-gp外排作用的抑制来提高该药物的口服生物利用度。首先,以泊洛沙姆407(F127)、泊洛沙姆188(F68)、硬脂酸聚烃氧(40)酯(PS)及PVPK-29/32为载体,以溶剂法及溶剂—熔融法制备了CyA固体分散体。红外光谱的结果显示,药物与载体间无明显的相互作用;差示扫描量热分析(DSC)、热台显微镜(HSM)、X-射线衍射(PXRD)等结果显示所制备的固体分散体中药物均以无定型或分子状态存在,而在物理混合物中则以结晶形式存在。以F127、F68及PS为载体制备的固体分散体在0.1%十二烷基硫酸钠(SLS)中60min的累积溶出百分率超过90%,而以PVP为载体制备的固体分散体在0.1%SLS中60min的累积溶出百分率则低于70%。以水为溶出介质时,PS/CyA固体分散体随着PS/CyA比例的增大,60min药物累积溶出百分率加大,当PS/CyA比例超过7∶1时,药物溶出速度不随PS增加而加快,在此比例以上的固体分散体的累积溶出百分率均超过90%;而以F68、F127为载体制备的固体分散体在水中的溶出呈现倒钟状,表明这两种载体对药物的增溶作用有限,难以维持药物溶出时的漏槽状态。溶剂-熔融法制备固体分散体过程中的乙醇用量、搅拌速度、水浴温度、粉体粒度在实验范围内均不影响药物的溶出度。最终确定制备条件为:4ml/g的乙醇用量、800rpm的搅拌速度、65℃制备温度及80目粉体。加入2%的微粉硅胶可显著提高粉体的流动性。灌装胶囊后,影响因素实验的结果表明光、高湿及高溫均可使CyA固体分散体胶囊的有关物质含量增加,其中高温还会降低本品的溶出度,高湿(25℃、RH92.5%)条件下易吸潮变质,说明本品对高温和高湿更加敏感,因此产品应密闭防潮包装,并在贮存时避免高温。加速实验及长期试验结果表明,CyA胶囊经双层铝塑复合膜包装后,在40℃/75%RH条件下放置一个月,溶出度即显著下降,PXRD结果显示药物重新析出结晶。在30℃/60%RH放置六个月及在25℃/60%RH贮存十八个月基本稳定。大鼠分别以1mg/100g的剂量灌胃给予CyA固体分散体与Neoral?后,两者的血药浓度—时间曲线相似,CyA固体分散体和Neoral?的各动力学参数如下:Cmax分别为2348.65±495.96和2557.38±555.09ng/mL;Tmax分别为2.00±0.67和1.71±0.67h、AUC0-60分别为40283.99±5203.16和41021.10±6239.87ng/mLh;MRT0-60分别为17.96±1.88和17.97±1.29h。CyA固体分散体的AUC为Neoral?的98.20%,表明CyA制成固体分散体后,大鼠口服后可有效地促进药物在胃肠道的吸收,达到与自微乳化制剂相似的吸收效果。健康志愿者单次口服CyA固体分散体胶囊与参比制剂自微乳化软胶囊后,CyA固体分散体和Neoral?的各动力学参数如下:Cmax分别为1500.3±348.8和1742.9±361.3ng/mL;Tmax分别为2.63±0.55和1.39±0.49h;AUC0.24分别为7993.0±2535.1和8295.6±2295.6ng/mLh;AUC0-∞分别为8851.7±2815.0和9258.0±2523.7ng/mLh;MRT0-24分别为6.48±1.15和5.76±1.04h。两者的AUC0-24、AUC0-∞、Cmax具有生物等效性。Tmax经Wilcoxon sign检验,试验制剂与参比制剂在统计学上有差异(P<0.01),试验制剂的达峰时稍晚。大鼠在体肠回流结果表明,CyA在十二指肠、空肠和回肠的吸收之间无显著性差异(P>0.05),明显优于结肠(P<0.01),说明CyA在小肠段吸收较好。在实验浓度范围内,药物累积吸收量与CyA浓度呈正比,说明药物吸收为被动扩散过程,提高药物在胃肠道中的溶解度有利于药物吸收。降低回流液中Na+浓度,单位面积药物的累积吸收量无显著性差异,表明药物吸收为非Na+依赖。相同浓度的新山地明与固体分散体溶液回流后,药物的累积吸收量之间无显著性差异,再次证明两种制剂的吸收程度相似。采用人肝微粒体,考察了PS对CYP1A2,CYP2A6,CYP2D6,CYP3A4各酶活性的影响,发现PS对CYP1A2,CYP2A6,CYP2D6和CYP3A4均有一定的抑制作用,且均随PS浓度的增大,抑制作用加强。抑制CYP1A2,CYP2A6,CYP2D6和CYP3A4酶活性50%所需PS的浓度(IC50)分别为0.3705,1.942,1.005和0.6585mg/mL。PS对各酶抑制作用由大至小分别为CYP1A2、CYP3A4、CYP2D6和CYP2A6。表明PS在体内可能抑制CYP3A4而增加CyA的吸收。不同浓度的PS均可显著提高P-gp底物罗丹明123(R123)细胞内摄取量和肠腔侧(A侧)至基底侧(B侧)的转运量,同时显著降低R123从B侧至A侧的排放量(P<0.05)。且均在PS为150μg/mL时作用最大。不同浓度的PS均可显著降低DPH的各向异性,增加细胞膜的流动性(P<0.05)。且随着PS浓度的增大,对膜流动性的影响作用加强。60min后细胞膜流动性基本不再随时间而改变。去除PS后,细胞膜流动性均在30min内快速回复,表明PS是安全的,对细胞膜流动性的影响是可逆的过程,不会给细胞带来永久的损伤。PS在考察时间和考察浓度范围内均不消耗细胞内ATP,不影响P-gpATP酶活性。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 前言
  • Ⅰ 提高CyA口服吸收的措施
  • Ⅱ 肠道P-gp和CYP3A4对口服药物吸收的影响
  • 参考文献
  • 第一章 环孢素固体分散体的制备及体外研究
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法和内容
  • 2.1 HPLC方法的建立与评价
  • 2.1.1 标准曲线的制备
  • 2.1.2 回收率试验
  • 2.1.3 精密度试验
  • 2.1.4 稳定性试验
  • 2.2 CyA在不同浓度SLS中溶解度的测定及溶出介质的选择
  • 2.3 固体分散体的制备
  • 2.3.1 溶剂法
  • 2.3.2 溶剂-熔融法
  • 2.4 物理混合物的制备
  • 2.5 溶解度实验
  • 2.6 CyA固体分散体的物相鉴定
  • 2.6.1 差示扫描量热分析
  • 2.6.2 X—射线衍射分析
  • 2.6.3 热台显微镜
  • 2.6.4 表面形态
  • 2.6.5 红外光谱(FTIR)
  • 2.7 体外溶出度测定
  • 2.8 数据处理
  • 2相似因子法'>2.8.1 f2相似因子法
  • 2.8.2 平均溶出时间(MDT)
  • 3 实验结果和讨论
  • 3.1 HPLC方法的建立与评价
  • 3.1.1 辅料及样品的HPLC图谱
  • 3.1.2 标准曲线
  • 3.1.3 回收率试验
  • 3.1.4 精密度试验
  • 3.1.5 稳定性试验
  • 3.2 溶出介质的选择
  • 3.3 固体分散体的制备
  • 3.4 溶解度试验结果
  • 3.5 CyA固体分散体的物相鉴定
  • 3.5.1 差示扫描量热分析(DSC)
  • 3.5.2 X—射线衍射图谱(PXRD)
  • 3.5.3 热台显微镜测定结果(HSM)
  • 3.5.4 SEM
  • 3.5.5 FTIR
  • 3.6 溶出度
  • 3.6.1 以0.1%SDS为溶出介质
  • 3.6.1.1 以PS为载体制备的固体分散体
  • 3.6.1.2 以F127为载体制备的固体分散体
  • 3.6.1.3 以F68为载体制备的固体分散体
  • 3.6.1.4 以PVP为载体制备的固体分散体
  • 3.6.2 以蒸馏水为溶出介质
  • 3.6.2.1 以PS为载体
  • 3.6.2.2 以F127、F68为载体
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 第二章 环孢素胶囊的制备及稳定性研究
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法和内容
  • 2.1 固体分散体制备过程各因素对药物溶出的影响
  • 2.2 休止角的测定
  • 2.3 主药与辅料相互作用研究
  • 2.4 粉末吸湿性考察
  • 2.5 临界相对湿度(CRH)的测定
  • 2.6 CyA胶囊的制备
  • 2.7 CyA胶囊溶出度试验
  • 2.7.1 HPLC方法的建立与评价
  • 2.7.1.1 标准曲线的制备
  • 2.7.1.2 回收率试验
  • 2.7.1.3 精密度试验
  • 2.7.1.4 稳定性试验
  • 2.7.2 CyA胶囊溶出度测定方法
  • 2.7.3 CyA溶出度均一性试验及溶出曲线
  • 2.8 胶囊中CyA含量测定方法
  • 2.8.1 HPLC方法的建立与评价
  • 2.8.1.1 标准曲线的制备
  • 2.8.1.2 精密度试验
  • 2.8.1.3 提取回收率试验
  • 2.9 有关物质的测定
  • 2.9.1 色谱条件与系统适用性试验
  • 2.9.2 有关物质的测定方法
  • 2.10 CyA胶囊的稳定性试验
  • 2.10.1 影响因素试验
  • 2.10.1.1 光照试验
  • 2.10.1.2 高温试验
  • 2.10.1.3 高湿试验
  • 2.10.2 加速试验
  • 2.10.3 长期试验
  • 2.11 X—射线衍射分析
  • 3 实验结果和讨论
  • 3.1 固体分散体制备各因素对药物溶出的影响
  • 3.2 休止角的测定
  • 3.3 主药与辅料相互作用研究
  • 3.4 粉末吸湿性
  • 3.5 临界相对湿度
  • 3.6 溶出度试验中HPLC分析方法评价
  • 3.6.1 相关图谱
  • 3.6.2 标准曲线的制备
  • 3.6.3 回收率试验
  • 3.6.4 精密度
  • 3.6.5 稳定性试验
  • 3.7 溶出度均一性试验及溶出曲线
  • 3.8 CyA胶囊的含量测定方法
  • 3.8.1 相关图谱
  • 3.8.2 标准曲线的制备
  • 3.8.3 提取回收率试验
  • 3.8.4 精密度试验
  • 3.9 有关物质的测定方法
  • 3.10 CyA胶囊的稳定性试验结果
  • 3.10.1 影响因素试验
  • 3.10.1.1 光照试验
  • 3.10.1.2 高温试验
  • 3.10.1.3 高湿试验
  • 3.10.2 加速试验
  • 3.10.3 长期试验
  • 3.11 X—射线衍射分析结果
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 第三章 环孢素固体分散体大鼠口服生物利用度研究
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法和内容
  • 2.1 血药浓度测定方法的建立与评价
  • 2.1.1 色谱条件
  • 2.1.2 血样处理
  • 2.1.3 标准曲线制备
  • 2.1.4 绝对回收率
  • 2.1.5 方法回收率
  • 2.1.6 日内和日间精密度
  • 2.1.7 检测限
  • 2.2 CyA固体分散体的大鼠口服吸收实验
  • 2.2.1 给药与取样
  • 2.2.2 血药浓度测定
  • 2.2.3 药物动力学参数计算和统计处理
  • 3 实验结果与讨论
  • 3.1 血药浓度测定方法的建立与评价
  • 3.1.1 空白血样及样品的HPLC图谱
  • 3.1.2 标准曲线
  • 3.1.3 绝对回收率
  • 3.1.4 方法回收率
  • 3.1.5 日内和日间精密度
  • ?的血药浓度数据'>3.2 CyA固体分散体及Sandimmun Neoral?的血药浓度数据
  • 3.3 模型拟合及药动学参数
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 第四章 环孢素胶囊的人体生物利用度及生物等效性试验
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法
  • 2.1 HPLC方法的建立与评价
  • 2.1.1 色谱条件
  • 2.1.2 CyA标准曲线工作液的制备
  • 2.1.3 CyA质控标准工作液的制备
  • 2.1.4 内标CyD工作液
  • 2.1.5 标准全血样品的制备
  • 2.1.6 人全血样品的质控标准的制备
  • 2.1.7 标准曲线的制备
  • 2.1.8 专一性(干扰试验)
  • 2.1.9 最低检测限
  • 2.1.10 准确度
  • 2.1.11 精密度
  • 2.1.11.1 批内精密度
  • 2.1.11.2 批间精密度
  • 2.1.12 提取回收率
  • 2.1.13 稳定性
  • 2.1.13.1 样品在全自动进样器中的稳定性
  • 2.1.13.2 多次冻融试验
  • 2.2 人全血样品的处理
  • 2.3 临床试验方案
  • 2.3.1 受试者要求
  • 2.3.2 实验设计
  • 2.4 药物动力学参数计算方法
  • 2.5 统计分析方法
  • 3 结果与讨论
  • 3.1 HPLC分析方法的建立与评价
  • 3.1.1 专一性
  • 3.1.2 标准曲线
  • 3.1.3 最低检测限(LOQ)
  • 3.1.4 准确度
  • 3.1.5 精密度
  • 3.1.5.1 批内精密度
  • 3.1.5.2 批间精密度
  • 3.1.6 提取回收率
  • 3.1.7 稳定性
  • 3.1.7.1 样品在全自动进样器中的稳定性
  • 3.1.7.2 多次冻融试验
  • 3.2 药物浓度-时间曲线
  • 3.3 药物动力学参数
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 第五章 大鼠在体肠回流法研究环孢素的吸收行为
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法
  • 2.1 HPLC方法的建立与评价
  • 2.1.1 标准曲线制备
  • 2.1.2 回收率和稳定性试验
  • 2.2 大鼠在体肠回流实验
  • 2.2.1 实验装置
  • 2.2.2 在体肠回流试验方法
  • 2.2.3 数据处理
  • 2.3 肠壁的物理吸附
  • 2.4 CyA最佳吸收部位研究
  • 2.5 CyA浓度对药物吸收的影响
  • ?与CyA固体分散体在体吸收的比较'>2.6 Sandimmun Neoral?与CyA固体分散体在体吸收的比较
  • +浓度的影响'>2.7 Na+浓度的影响
  • 3.实验结果
  • 3.1 CyA分析方法评价
  • 3.1.1 相关图谱
  • 3.1.2 标准曲线
  • 3.2 CyA在空白肠回流液中稳定性和回收率试验
  • 3.3 肠壁的物理吸附
  • 3.4 CyA的最佳吸收部位
  • 3.5 CyA浓度对药物吸收的影响
  • +浓度的影响'>3.6 Na+浓度的影响
  • 3.7 新山地明与固体分散体中CyA的在体吸收
  • 4 讨论
  • 4.1 回流液中药物浓度的选择
  • 4.2 流速的影响
  • 4.3 小肠吸收水分的影响
  • 4.4 管道系统对药物吸附的影响
  • 5 小结
  • 参考文献
  • 第六章 PS对细胞色素P450酶活性的影响研究
  • 1 材料和仪器
  • 2 实验方法
  • 2.1 HPLC分析方法
  • 2.2 人肝微粒体制备
  • 2.3 PS对人肝脏微粒体代谢的影响
  • 2.4 统计分析
  • 3 结果与讨论
  • 3.1 HPLC分析方法
  • 3.2 PS对P450酶活性的影响
  • 3.2.1 PS对CYP1A2的影响
  • 3.2.2 PS对CYP2A6的影响
  • 3.2.3 PS对CYP2D6的影响
  • 3.2.4 PS对CYP3A4的影响
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 第七章 PS对P-糖蛋白抑制作用的研究
  • 1 材料与仪器
  • 2 实验方法
  • 2.1 PS临界胶束浓度的测定
  • 2.2 R123标准曲线的制备
  • 2.3 细胞单层培养
  • 2.4 细胞毒性评价—MTT法
  • 2.5 摄取实验
  • 2.5.1 时间对R123摄取的影响
  • 2.5.2 PS浓度和P-糖蛋白抑制剂对R123摄取的影响
  • 2.6 转运试验
  • 2.7 数据处理
  • 2.8 PS对细胞膜流动性的影响
  • 2.9 PS对细胞中ATP的影响
  • 2.10 PS对P-gp ATP酶活性的影响
  • 3 实验结果与讨论
  • 3.1 PS临界胶束浓度的测定
  • 3.2 R123标准曲线
  • 3.3 MTT法结果
  • 3.4 细胞摄取实验结果
  • 3.4.1 时间对R123摄取的影响
  • 3.4.2 PS浓度和P-糖蛋白抑制剂对R123摄取的影响
  • 3.5 PS浓度对R123跨膜转运的影响
  • 3.6 PS对细胞膜流动性的影响
  • 3.7 PS对细胞内ATP的影响
  • 3.8 PS对P-gp ATP酶活性的影响
  • 4 小结
  • 参考文献
  • 全文总结
  • 本文创新点
  • 攻读博士期间发表论文情况
  • 致谢
  • 相关论文文献

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