紫草素对人气道平滑肌细胞增殖的影响及其作用机制的探讨

紫草素对人气道平滑肌细胞增殖的影响及其作用机制的探讨

论文摘要

一、研究背景支气管哮喘是气道的慢性炎症性疾病,其反复发作可引起气道重构,导致不可逆性气流阻塞及持续性非特异性气道高反应性。其中气道平滑肌细胞(airwaysmooth muscle cells,ASMCs)的增殖是气道重构的重要原因之一。紫草素(shikonin)是从中国传统中药材—紫草的根中提取的一种萘醌类化合物,国内外众多研究表明紫草素及其衍生物具有明确的抗炎、抗氧化,抗细菌、真菌,抑制肿瘤细胞及血管平滑肌细胞增殖、促进凋亡,抗血管新生,抗HIV等多种生物学效应。其是否对人气道平滑肌细胞(human airway smooth musclecells,HASMCs)有抑制增殖的作用,国内外尚未见相关研究。二、研究目的本实验以体外培养的HASMCs为研究对象,观察紫草素对HASMCs增殖的影响,并对其作用机制作初步的探讨,为其治疗支气管哮喘气道重构提供实验依据。三、材料和方法1、经患者同意,取南方医院胸外科同期做肺叶切除术患者的正常肺叶、段支气管标本。2、组织块贴壁法培养人支气管平滑肌细胞,倒置显微镜观察和抗平滑肌α肌动蛋白单克隆抗体(α-actin)免疫细胞化学法进行HASMCs鉴定。3、经0μmol/L(对照组)及0.5、1、2、5、10、20、40μmol/L浓度的紫草素分别作用12、24、48h后,应用MTS法测定紫草素对HASMCs的细胞增殖的影响。4、经0μmol/L(对照组)及5、10、20、40μmol/L浓度的的紫草素分别作用24h后,应用流式细胞术分析紫草素对细胞周期的影响。5、经0μmol/L(对照组)及20μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,应用SP免疫细胞化学法检测紫草素对增殖细胞核抗原(proliferating cell nuelearantigen,PCNA)及P21蛋白表达的影响。6、经0μmol/L(对照组)及20μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,应用逆转录多聚酶链反应(Reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR)检测紫草素对P21基因表达的影响。7、统计学处理所有数据均以(?)±s表示,MTS结果采用重复测量数据的方差分析,两样本均数比较采用两独立样本t检验,多组均数比较采用单向方差分析(One-WayANOVA),各组间比较采用LSD法。采用SPSS13.0软件进行处理,以P<0.05表示差异有统计学意义。四、结果1、HASMCs的形态及免疫细胞化学鉴定倒置显微镜下ASMCs呈长梭形,生长至融合后,细胞呈现出特征的“峰谷”状。免疫细胞化学法对α-actin鉴定,光镜下可见细胞浆中较多棕黄色颗粒。2、紫草素对HASMCs增值的影响在紫草素作用12h时,0μmol/L(对照组)及0.5、1、2、5、10、20、40μmol/L浓度的紫草素组细胞吸光度(OD值)分别为:1.356±0.203,1.370±0.314,1.439±0.942,1.304±0.120,1.235±0.256,1.347±0.285,0.978±0.097,0.707±0.066。在紫草素作用24h时,0μmol/L(对照组)及0.5、1、2、5、10、20、40μmol/L浓度的紫草素组细胞OD值分别为:1.339±0.209,1.285±0.260,1.264±0.198,1.270±0.258,1.285±0.211,1.291±0.181,0.918±0.212,0.718±0.214。在紫草素作用48h时,0μmol/L(对照组)及0.5、1、2、5、10、20、40μmol/L浓度的紫草素组细胞OD值分别为:1.084±0.166,1.081±0.246,1.062±0.268,1.061±0.283,1.197±0.189,1.227±0.163,0.833±0.368,0.749±0.424。统计学分析显示:0.5、1、2、5、10μmol/L紫草素组与对照组间OD值差异不显著(F=932.578,P值分别为0.926、0.978、0.753、0.893、0.849);20μmol/L和40μmol/L紫草素组与对照组OD值比较,差异有统计学意义(F=932.578,P值分别为0.033、0.003),但两者之间差异不显著(F=932.578,P:0.233);不同浓度紫草素作用12h与24hOD值相比,无显著性差异(F=6.491,P=0.254)。但两者与48 hOD值相比,差异均有统计学意义(F=6.491,P值分别为0.018、0.007);时间与浓度无交互作用(P=0.905)。3、紫草素对HASMCs细胞周期的影响经0μmol/L(对照组)及5、10、20、40μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,细胞G0/G1期比例分别为(75.0±9.0)%,(83.2±6.4)%,(85.0±6.5)%,(90.8±2.7)%,(91.7±2.4)%。其中,5μmol/L和10μmol/L浓度的紫草素组与对照组间差异无统计学意义(F=3.884,P值分别为0.120、0.065)。20μmol/L和40μmol/L浓度的紫草素组与对照组间差异有统计学意义(F=3.884,P值分别为0.008、0.006),但两者之间无显著性差异(F=3.884,P=0.857)。细胞G2/M期比例分别为(8.8±5.9)%,(7.9±9.0)%,(7.5±6.9)%,(5.3±3.4)%,(3.1±0.6)%,各组间无显著性差异(F=0.459,P=0.765)。细胞S期比例分别为(13.2±7.6)%,(8.9±4.4)%,(7.5±4.5)%,(3.9±0.7)%,(4.8±1.0)%,各组间无显著性差异(F=2.088,P=0.157)。4、紫草素对PCNA及P21蛋白表达的影响。经0μmol/L(对照组)及20μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,细胞PCNA阳性表达率分别为:(74.1±10.7)%,(41.8±3.1)%。二者差异有统计学意义(t=5.015,P=0.007)。经0μmol/L(对照组)及20μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,细胞P21阳性表达率分别为:(9.3±2.5)%,(23.0±7.0)%。二者差异有统计学意义(t=3.182,P=0.033)。5、紫草素对P21基因表达的影响。经0μmol/L(对照组)及20μmol/L浓度的紫草素分别作用24h后,P21基因表达相对量分别为:0.311±0.007,0.571±0.149。二者差异有统计学意义(t=3.013,P=0.039)。五、结论1、20μmol/L和40μmol/L浓度的紫草素可抑制人气道平滑肌细胞的增殖,其抑制作用以48h最强。2、20μmol/L和40μmol/L浓度的紫草素可提高人气道平滑肌细胞G0/G1期细胞的比例,阻滞细胞周期进程。3、20μmol/L浓度的紫草素可抑制人气道平滑肌细胞PCNA蛋白的表达,提高P21蛋白的表达。4、20μmol/L浓度的紫草素可提高人气道平滑肌细胞P21基因的表达。5、紫草素能有效抑制人气道平滑肌细胞的增殖,其机制可能是通过上调P21基因和蛋白的表达而起作用的。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 前言
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 缩略词表
  • 不足与展望
  • 论文发表情况
  • 致谢
  • 研究生毕业论文统计学审稿证明
  • 相关论文文献

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    • [2].血管紧张素Ⅱ诱导被动致敏人气道平滑肌细胞合成Ⅰ型胶原[J]. 第三军医大学学报 2013(18)
    • [3].地塞米松对哮喘小鼠气道平滑肌细胞中胸腺活化调节趋化因子表达的影响[J]. 山东医药 2012(05)
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    • [5].不同刺激因子对人气道平滑肌细胞白细胞介素-22R1表达的影响[J]. 南方医科大学学报 2011(06)
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    • [12].尼古丁对大鼠气道平滑肌细胞的促增殖作用[J]. 广东医学 2014(18)
    • [13].气道平滑肌细胞免疫调节功能与哮喘[J]. 山西医药杂志 2013(01)
    • [14].启事[J]. 山东医药 2011(07)
    • [15].支气管哮喘大鼠气道平滑肌细胞表型转变及止喘胶囊的干预作用[J]. 中国中西医结合杂志 2010(09)
    • [16].Ad-sTNFRI-IgGFc腺病毒载体的构建及其转染人气道平滑肌细胞[J]. 生物工程学报 2008(05)
    • [17].紫草素抑制人气道平滑肌细胞的增殖[J]. 南方医科大学学报 2008(05)
    • [18].改良组织贴块法培养大鼠气道平滑肌细胞[J]. 温州医学院学报 2010(06)
    • [19].哮喘小鼠气道平滑肌细胞磷酸二酯酶4D基因启动子甲基化的研究[J]. 广东医学 2019(05)
    • [20].改良组织块消化法建立大鼠气道平滑肌细胞模型[J]. 现代生物医学进展 2009(14)
    • [21].哮喘疾病中肥大细胞与气道平滑肌细胞的相互作用[J]. 常州大学学报(自然科学版) 2018(04)
    • [22].细胞外信号调节蛋白激酶对哮喘大鼠气道平滑肌细胞周期的影响[J]. 中国呼吸与危重监护杂志 2010(01)
    • [23].气道平滑肌细胞在哮喘中的作用研究进展[J]. 世界最新医学信息文摘 2018(06)
    • [24].针刺对哮喘大鼠气道重建模型气道平滑肌细胞T型钙通道蛋白表达的影响[J]. 中国针灸 2012(06)
    • [25].三种脂质体法转染试剂转染原代大鼠气道平滑肌细胞效果的比较[J]. 中国医药生物技术 2013(05)
    • [26].辛伐他汀通过氧化应激抑制人气道平滑肌细胞增殖[J]. 中华哮喘杂志(电子版) 2013(02)
    • [27].慢性哮喘肺组织组蛋白去乙酰化酶活性降低对气道平滑肌细胞表型转变的影响[J]. 第二军医大学学报 2010(09)
    • [28].Rho激酶通路的激活对血管收紧缩张的素作Ⅱ用诱导的人气道平滑肌细胞[J]. 南方医科大学学报 2011(08)
    • [29].黄芪多糖抑制气道平滑肌细胞α-SMA的表达[J]. 山东大学学报(医学版) 2011(02)
    • [30].尼可地尔对TGF-β1诱导人气道平滑肌细胞肥大的实验研究[J]. 福建医药杂志 2019(01)

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