Aspergillus japonicus果糖基转移酶及其改性大豆低聚糖的研究

Aspergillus japonicus果糖基转移酶及其改性大豆低聚糖的研究

论文摘要

本文利用TLC和HPLC法从实验室保藏的真菌菌株中筛选到一株对蔗糖具有转果糖基作用的菌株。通过传统的形态学特性和生理生化试验,初步鉴定该菌株为曲霉属黑曲霉群。该菌最适生长温度为28-32℃,最适生长pH为5.5,在pH 4-7.5范围内均能生长。利用RT-PCR技术,成功地扩增菌株的18S rDNA基因,并在Genebank数据库申请登记(登记号为AY728018)。该菌株的18S rDNA核苷酸序列全长为559bp,与GenBank中已知的真菌18S rDNA序列进行相似性分析,发现它与Aspergillus japonicus菌株的18S rDNA序列相似性达到98.36%,因此将该菌株归类为Aspergillus japonicus。通过急性毒理试验证明该菌株是安全的。采用紫外-LiCl复合诱变对筛选到的菌株进行诱变育种,最终获得高产菌株JN19,其产酶活力为出发菌株的1.62倍。该菌株以果糖苷物质作为碳源时,能够大量合成果糖基转移酶。蔗糖是Aspergillus japonicus JN19产果糖基转移酶的高效诱导剂,酵母膏是果糖基转移酶产生的最佳氮源,K2HPO4可以有效的促进果糖基转移酶的产生。通过响应面法确定Aspergillus japonicus JN19产酶优化培养基为(g/L):蔗糖185.0,酵母膏18.5,K2HPO4 1.0,NaNO3 3.0,MgSO4·7H2O 0.5,CMC 2.0,水1000mL,pH5.5;优化的产酶条件为:初始pH5.5,摇床振荡速度150rpm,接种量10%,28℃,培养96h,果糖基转移酶活稳定在30U/mL左右。90%以上的A. japonicusJN19果糖基转移酶存在于细胞内。该酶的最适温度为50℃,在50℃以下保温1h,果糖基转移酶活基本保持不变;最佳pH为5.5,在pH5.0-6.5范围内较稳定。多数金属离子对A. japonicus JN19果糖基转移酶有抑制作用,Cu2+、Ag+和Al3+对果糖基转移酶产生有较强的抑制作用;Mn2+对果糖基转移酶活力的影响不大;Mg2+对果糖基转移酶活具有强烈的激活作用,可以将果糖基转移酶活力提高2.2倍,说明该酶的活性维持需要金属离子的参与,最佳Mg2+浓度为0.5mmol/L。在上述条件下测定该酶的动力学常数:Km值为0.729mol/L,Vmax为84.745mol/min。葡萄糖是果糖基转移酶的竞争性抑制剂,抑制常数Ki为6.107mol/L。该酶具有高度的底物专一性,能够催化蔗糖和棉子糖等末端具有2-β-D-呋喃果糖基的糖糖苷键断裂,并以自身为受体合成新的低聚糖,但对单糖和其它双糖均无转糖基作用。蔗糖和棉子糖等含有呋喃糖环的糖是该酶的最佳受体;海藻糖能够接受果糖基转移酶转移的果糖基合成新的低聚糖。利用RT-PCR技术,成功克隆到了果糖基转移酶cDNA结构基因,并在Genebank数据库申请登记,登记号为DQ439972。利用软件分析,发现来源于Aspergillus japonicus JN19的果糖基转移酶cDNA结构基因同Genebank数据库公布的编码果糖基转移酶

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 绪论
  • 1.1 果糖基转移酶的来源及研究现状
  • 1.1.1 微生物源果糖基转移酶的催化反应机理
  • 1.1.2 微生物源果糖基转移酶的生产
  • 1.1.3 果糖基转移酶纯化及性质
  • 1.2 果糖基转移酶的改造
  • 1.2.1 果糖基转移酶的固定化研究
  • 1.2.2 果糖基转移酶的分子生物学研究
  • 1.3 大豆低聚糖的研究现状
  • 1.3.1 大豆低聚糖的特性及生理功能
  • 1.3.2 国内外大豆低聚糖的研究概况
  • 1.4 立题意义及研究内容
  • 1.4.1 立题意义
  • 1.4.2 研究内容
  • 参考文献
  • 第二章 产果糖基转移酶菌株的筛选及鉴定
  • 2.1 引言
  • 2.2 材料与方法
  • 2.2.1 材料
  • 2.2.2 主要仪器
  • 2.2.3 实验方法
  • 2.2.4 HPLC 条件
  • 2.3 结果与讨论
  • 2.3.1 薄层层析法(TLC)和高效液相(HPLC)法筛选产酶菌株
  • 2.3.2 菌种的形态特征
  • 2.3.3 菌种的培养特征与生理生化特征
  • 2.3.4 菌株185 rDNA 全序列测定与分析
  • 2.3.5 菌株的安全性实验
  • 2.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第三章 A. japonicus JN19 诱变育种及产酶条件优化
  • 3.1 引言
  • 3.2 材料与方法
  • 3.2.1 材料
  • 3.2.2 分析方法
  • 3.2.3 菌株的诱变
  • 3.2.4 响应面法优化产酶培养基
  • 3.3 结果与讨论
  • 3.3.1 菌种的诱变选育
  • 3.3.2 产酶培养基的优化
  • 3.3.3 发酵条件的优化
  • 3.3.4 产酶时间曲线
  • 3.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第四章 A. japonicus JN19果糖基转移酶性质研究
  • 4.1 引言
  • 4.2 材料与方法
  • 4.2.1 材料
  • 4.2.2 分析方法
  • 4.2.3 粗酶液提纯
  • 4.2.4 果糖基转移酶动力学常数测定
  • 4.2.5 果糖基转移酶底物特异性
  • 4.2.6 果糖基转移酶受体特异性
  • 4.3 结果与讨论
  • 4.3.1 果糖基转移酶的分布
  • 4.3.2 硫酸铵沉淀分级
  • 4.3.3 果糖基转移酶粗酶性质
  • 4.3.4 底物特异性
  • 4.3.5 受体特异性
  • 4.3.6 A. japonicusJN19 果糖基转移酶作用机理推测
  • 4.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第五章 果糖基转移酶cDNA的克隆及在酿酒酵母中的表达
  • 5.1 引言
  • 5.2 材料与方法
  • 5.2.1 材料
  • 5.2.2 试验方法
  • 5.3 结果与讨论
  • 5.3.1 RNA 的提取
  • 5.3.2 反转录、cDNA 第二链的合成及PCR 扩增
  • 5.3.3 果糖基转移酶cDNA 结构基因酿酒酵母表达载体的构建
  • 5.3.4 表达载体pYX212-FTA 的酶切鉴定
  • 5.3.5 酿酒酵母阳性转化子的PCR 鉴定
  • 5.3.6 A.japonicusJN19 果糖基转移酶cDNA 结构基因在酿酒酵母W303-1A 中的表达及重组子果糖基转移酶酶活测定
  • 5.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第六章 A.japonicus JN19 菌体固定化及改性大豆低聚糖研究
  • 6.1 引言
  • 6.2 材料与方法
  • 6.2.1 材料
  • 6.2.2 菌体固定化
  • 6.2.3 酶活的测定
  • 6.2.4 固定化菌体的性质
  • 6.2.5 反复批式酶解大豆低聚糖
  • 6.2.6 分析方法
  • 6.3 结果与讨论
  • 6.3.1 固定化条件确定
  • 6.3.2 电镜照片分析
  • 6.3.3 固定化菌体性质
  • 6.3.4 固定化菌体的操作稳定性
  • 6.3.5 固定化菌体改性大豆低聚糖
  • 6.4 本章小结
  • 参考文献
  • 论文主要结论
  • 论文创新点
  • 博士在读期间已发表论文
  • 致谢
  • 附图
  • 相关论文文献

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