家畜附红细胞体体外无细胞培养研究

家畜附红细胞体体外无细胞培养研究

论文摘要

附红细胞体(Haemomycoplasmas,HMs)是一类无细胞壁、寄生在多种脊椎动物红细胞表面的微生物。附红细胞体引起的疾病即附红细胞体病(Eperythrozoonosis)简称附红体病,猪的附红体病临床上较为多见,对不同年龄段的猪均有危害,现已遍及世界各地,给全球养猪业造成了巨大的经济损失。由于缺乏体外培养系统,HMs研究进展缓慢。早年根据其部分生物学特性被分类为立克次体(Rickettsiales)。近年来研究发现HMs在系统进化树上与霉形体(Mycoplasma)的关系最为接近(76%~83%),且基因组大小(730~770 kb)、碱基组成特点(低G+C%)亦与霉形体类似,因而我们推测附红细胞体的营养需要、代谢特点可能与霉形体有相似之处,为了更详细观察和研究各种动物HMs的菌体形态、生理生化以及生长繁殖等特性,破解HMs在体外无细胞培养基中不能人工培养的难题,为HMs的临床血清学诊断、药物筛选及疫苗研制等提供理论基础,我们将猪等各种动物附红细胞体接种到通过配方筛选的霉形体培养基内,传代时不添加任何阴性红细胞,而以更换半量培养基的方式进行了体外培养。结果表明,动物附红细胞体在体外可长期传代并持续存活;皱缩的附红细胞体经培养可以恢复长大;将猪、羊附红细胞体从红细胞表面洗脱后亦能按上述方法用霉形体培养基进行连续传代并保持存活;但未能获得附红细胞体大量增殖的结果。在此基础上进行了病原体低温保存方法研究、抗生素敏感性试验,主要研究内容如下:1.猪、兔、犬、牛、羊附红细胞体的体外连续培养临床发生附红细胞体病猪血样,经PCR扩增和Giemsa染色镜检证明感染猪附红细胞体(Mycoplasm suis,M.suis)。经PCR扩增所得DNA片段,与M.suis已知序列同源性达99%以上。兔、犬、牛、羊血样若干份,经Giemsa染色镜检为HM阳性,红细胞染虫率(PPE)在50%~95%之间。经预试验对培养条件优化后,将猪、兔、犬、牛、羊等动物的HM阳性红细胞接种到多种培养基培养内,不添加阴性红细胞,每次传代更换半量培养基,结果发现经配方筛选的霉形体培养基PPLO-S-BS(PPLO Broth添加牛血清等成份)培养猪、兔、犬HM效果最佳,连续维持虫体(附红细胞体简称,下同)存活分别达280d、300 d、270 d以上,红细胞染虫率、染虫强度保持不变,虫体饱满光亮、活力较强;牛HM接种培养基后虫体皱缩,但经PPLO-S-BS等6种培养基培养虫体长大,并能维持其存活达120~150 d以上;PPLO-S-BS等8种培养基可维持羊HM存活达90~120 d以上。将M.suis、羊HM从红细胞洗脱后同法用PPLO-S-BS分别培养,培养至90 d、100 d左右后每5~10 d按1:2(v/v)的比例传代,累计传代各50次、45次,连续培养380 d后终止。通过对M.suis培养物PCR鉴定,对M.suis、兔HM、犬HM培养物的感染阴性红细胞试验,对M.suis、犬HM培养物扫描电镜观察,对所有培养物的光镜观察、抗生素敏感性试验,证实经长期培养的虫体与接种物为相同病原,所有传代附红细胞体一直处于存活并缓慢增殖状态。2.猪、兔、犬、牛、羊附红细胞体的低温保存研究将猪、兔、犬、牛、羊感染HM全血以柠檬酸三钠抗凝等方法处理后,于4℃保存,结果发现柠檬酸三钠抗凝后直接保存效果最佳,至少3 weeks后红细胞基本保持完整,染虫率不变,虫体存活状态良好,保存后皱缩的虫体经培养可以恢复长大。用改良低浓度甘油冷冻法等3种方法长期低温冻存猪、兔、犬、牛、羊感染HM的红细胞,结果发现改良低浓度甘油冷冻法冻存上述染虫红细胞效果最佳,复苏后红细胞存活率最高,PPE不变,HM保持有较好的活性。3.猪、兔、犬附红细胞体药物敏感试验有效药物作用于染虫红细胞后,虫体首先从红细胞上游离至培养液中,具有明显的自主运动,后运动减弱,虫体消失不见。红细胞染虫率、染虫强度不同程度下降,形态恢复正常,运动特点消失。用添加有强力霉素等8种抗生素的PPLO-S-BS分别对猪、兔、犬HM进行体外培养,结果发现,强力霉素杀灭效果最佳,强力霉素、土霉素杀灭和抑制HM的效果明显高于其他抗生素,可明显减小HM的PPE和PHE(p<0.05)。泰乐菌素对HM有抑制作用,可明显减小HM的PHE(p<0.05)和染虫强度,但对染虫率影响不大。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略词表(ABBREVIATION)
  • 插图和附表清单
  • 第1章 附红细胞体研究进展
  • 1.1 病原学
  • 1.1.1 形态及染色、运动特点
  • 1.1.2 分类学研究进展
  • 1.1.3 化学组成
  • 1.1.4 HM代谢、增殖及培养研究
  • 1.1.5 对理化因素的抵抗力
  • 1.1.6 致病力
  • 1.2 流行病学
  • 1.2.1 易感动物
  • 1.2.2 传播方式
  • 1.2.3 潜伏期、症状
  • 1.2.4 发病率和死亡率
  • 1.3 危害
  • 1.4 诊断
  • 1.4.1 镜检
  • 1.4.2 动物试验
  • 1.4.3 分子生物学诊断
  • 1.4.4 血清学
  • 1.5 治疗
  • 1.5.1 敏感药物
  • 1.5.2 治疗
  • 1.6 预防和控制
  • 1.7 公共卫生意义
  • 第2章 猪附红细胞体的体外培养研究
  • 2.1 研究目的和意义
  • 2.2 材料与方法
  • 2.2.1 材料
  • 2.2.2 方法
  • 2.3 结果与分析
  • 2.3.1 M.suis分离鉴定结果
  • 2.3.2 感染M.suis红细胞培养结果
  • 2.3.3 M.suis洗脱分离物培养结果
  • 2.3.4 M.suis培养物的鉴定结果
  • 2.4 讨论
  • 2.4.1 PPLO的选用及添加成分的筛选
  • 2.4.2 M.suis增殖的问题
  • 2.4.3 染虫红细胞接种浓度
  • 2.4.4 培养物的鉴定
  • 2.4.5 附红细胞体对红细胞的依赖性
  • 2.4.6 培养条件优化
  • 2.4.7 血清的作用
  • 2.4.8 M.suis的分离
  • 2.4.9 染虫率统计
  • 2.4.10 其它培养方法的尝试
  • 2.5 小结
  • 第3章 兔、犬、牛、羊附红细胞体的体外培养
  • 3.1 研究目的和意义
  • 3.2 材料与方法
  • 3.2.1 材料
  • 3.2.2 方法
  • 3.3 结果与分析
  • 3.3.1 兔附红细胞体体外培养结果
  • 3.3.2 犬附红细胞体体外培养结果
  • 3.3.3 牛附红细胞体体外培养结果
  • 3.3.4 羊附红细胞体体外培养结果
  • 3.4 讨论
  • 3.4.1 附红细胞体的生长和增殖
  • 3.4.2 兔附红细胞体体外培养特点
  • 3.4.3 犬附红细胞体体外培养特点
  • 3.4.4 牛附红细胞体体外培养特点
  • 3.4.5 羊附红细胞体体外培养特点
  • 3.4.6 附红细胞体的营养需要
  • 3.4.7 血清对红细胞及附红细胞体的作用
  • 3.4.8 红细胞的作用
  • 3.5 小结
  • 第4章 附红细胞体的体外保存
  • 4.1 研究目的和意义
  • 4.2 材料与方法
  • 4.2.1 材料
  • 4.2.2 方法
  • 4.3 结果与分析
  • 4.3.1 抗凝剂对附红细胞体及红细胞保存的影响
  • 4.3.2 4℃保存后附红细胞体的培养活性
  • 4.3.3 低温冷冻猪、兔、犬、牛、羊红细胞及附红细胞体的结果
  • 4.4 讨论
  • 4.4.1 不同抗凝液对附红细胞体及红细胞的影响
  • 4.4.2 冷冻保护剂的选择
  • 4.4.3 血清以及培养液对保存效果的影响
  • 4.4.4 低温保存对附红细胞体培养活性的影响
  • 4.4.5 不同种类动物的染虫红细胞保存比较
  • 4.4.6 其它因素对附红细胞体保存的影响
  • 4.5 小结
  • 第5章 猪、兔、犬附红细胞体体外药物杀灭试验
  • 5.1 研究目的和意义
  • 5.2 材料与方法
  • 5.2.1 材料
  • 5.2.2 方法
  • 5.3 结果与分析
  • 5.3.1 有效药物对HM的杀灭作用
  • 5.3.2 M.suis体外药物敏感性试验结果
  • 5.3.3 兔附红细胞体体外药物敏感性试验结果
  • 5.3.4 犬附红细胞体体外药物敏感性试验结果
  • 5.4 讨论
  • 5.4.1 药物杀灭或抑制附红细胞体效果的评价
  • 5.4.2 不同药物杀灭与抑制附红细胞体效果的关系
  • 5.4.3 药物的毒副作用
  • 5.4.4 与霉形体药物敏感性的比较
  • 5.4.5 药物选择
  • 5.5 小结
  • 参考文献
  • 附录
  • 致谢
  • 相关论文文献

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